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sars37

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[求助] 求确认双内切酶体系

TAKARA的Hind III 和EcoR I  酶,目的基因在1000bp左右,连接在2736bp的T-Vector上,PCDNA在3000多bp左右,现用两个限制性内切酶对T质粒和PCDNA进行酶切,T质粒的浓度在5.5ng/ul,PCDNA的浓度在0.8ng/ul,准备的酶切体系如下:

T质粒           稀释5倍后取1ul
10*M buffer          2ul
Hind III                  1ul
EcoR I                   1ul
h2o                       15ul
total                       20ul
37°   过夜

PCDNA                  1ul
10*M buffer          2ul
Hind III                  1ul
EcoR I                   1ul
h2o                       15ul
total                       20ul
37°  过夜

求大神指导修改体系,还有几个小问题:
过夜反应是否必要?2小时酶切可以吗?
如果想要多回收DNA,加大上样量,把体系改成40ul可以吗?
据说酶切好后,纯化电泳时做的胶不能加EB,要在跑完电泳后放在EB中泡10MIN,不然会影响后面的连接,是这样吗?
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ninjakiss

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
sars37: 金币+20, ★★★很有帮助 2013-08-29 17:23:45
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-29 18:07:46
体系本身没有什么意见;每一种酶的活力均不一致,具体的还是参照说明书来看看(不过我至少还是切3小时的,不是迫不得已不会过夜,怕影响结果);加大上样量是可以的,但是请在配制体系时注意混匀,如果觉得单独一个管中体系过大,你可以将它们多分装一些,到时候加样的时候组合起来加也可以的(一般胶回收我们习惯是50的体系点一个大孔,不是40的),还有就是点样的时候尽可能在一个孔中多加一些,而不是增加孔数,这是为了增加你的条带亮度;染胶还有扫胶、切胶的时候一定要尽快完成,防止目的片段发生改变。当然,少染一会条带可能会有些暗,其实只要是大小正确,赶快切就好了。至于你是在胶里加EB还是跑完以后再染EB,这本身没有什么分别(我都试过,没什么问题)。
2楼2013-08-29 16:53:48
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sars37

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引用回帖:
2楼: Originally posted by ninjakiss at 2013-08-29 16:53:48
体系本身没有什么意见;每一种酶的活力均不一致,具体的还是参照说明书来看看(不过我至少还是切3小时的,不是迫不得已不会过夜,怕影响结果);加大上样量是可以的,但是请在配制体系时注意混匀,如果觉得单独一个 ...

说明书上的活性确认:在50ul反应液中,37°温度下反应1小时,将1ug的DNA完全分解的酶量定义为1个活性单位U。一般反应体系:
EcoR I           1ul
10*buffer       2ul
DNA              ≤1ug
h2o             up to 20 ul
50ul的全部加在1.75mm的孔?有一次加40ul都会溢出来。。。50ul体系的话这样可以吗?
T质粒           稀释5倍后取2ul
10*M buffer          5ul
Hind III                  2ul
EcoR I                   2ul
h2o                       39ul
total                       50ul
37°   过夜

PCDNA                  2ul
10*M buffer          5ul
Hind III                  2ul
EcoR I                   2ul
h2o                       39ul
total                       50ul
37°  过夜
3楼2013-08-29 17:09:33
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ninjakiss

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖交流! 2013-08-29 21:19:32
引用回帖:
3楼: Originally posted by sars37 at 2013-08-29 17:09:33
说明书上的活性确认:在50ul反应液中,37°温度下反应1小时,将1ug的DNA完全分解的酶量定义为1个活性单位U。一般反应体系:
EcoR I           1ul
10*buffer       2ul
DNA              ≤1ug
h2o            ...

说明书说1小时,那么就可以按照1小时来操作。制胶的梳子我们这里有三种规格,你说的1.75的可能是最小的那一种,我试过用这一种加15,那么我常常酶切30,点满满两个孔。我说的50的胶槽一横排就只有13的大孔,点50无压力的。如果你那边只有小孔梳子的话,你也可以多制备一些体系,大不了多点几个孔就是了。不过还是尽可能加大每一孔的样品量,让它们变得亮一些,你好在没染够的前提下也能发现你的目的条带。
4楼2013-08-29 17:15:27
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sars37

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引用回帖:
4楼: Originally posted by ninjakiss at 2013-08-29 17:15:27
说明书说1小时,那么就可以按照1小时来操作。制胶的梳子我们这里有三种规格,你说的1.75的可能是最小的那一种,我试过用这一种加15,那么我常常酶切30,点满满两个孔。我说的50的胶槽一横排就只有13的大孔,点50无 ...

说错了,我们最大的是1.5的,最多也就能上40,那我就都乘以2 ,点40一个孔吧
5楼2013-08-29 17:34:48
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aamosquito

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T是5.5ng/ul?T是5.5ug/ul吧。。。
6楼2013-08-29 17:57:58
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sars37

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引用回帖:
6楼: Originally posted by aamosquito at 2013-08-29 17:57:58
T是5.5ng/ul?T是5.5ug/ul吧。。。

恩 对的
7楼2013-08-29 20:52:27
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小鞋匠126_

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【答案】应助回帖

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kx444555: 金币+1, 鼓励交流 2013-08-30 13:41:08
sars37: 金币+10, ★★★很有帮助 2013-08-30 16:05:39
加大反应体系到40ul,把你的各个反应液同比例扩大2被就行了。你的模版量太少了,我们提出质粒500ng/ul 都要切2-3ul。酶切不是说时间越长越好,建议考虑5小时,太长容易吧载体切碎,太多切不开。

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8楼2013-08-30 10:08:31
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sars37

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送红花一朵
???????:
8?: Originally posted by СЬ??126_ at 2013-08-30 10:08:31
?????????40ul???????????????????????2??????????????????????????????????500ng/ul ?????2-3ul????в????????????????????5С??????????????????飬????в?????

你好,我昨天???的酶切,也??切了4个??时,跑电泳??????现PCDNA的带虽然很亮,但是都是碎的,这是切碎了???,因为我的T质粒是5000ng/ul这样,所以稀释了五??,这样???以???,PCDNA800ng/ul,昨天40ul体系,切2ul的PCDNA和2ul稀释???的T质粒,但是切完???T质粒的???带很淡,PCDNA???被切碎,哎,好无助,求解救
9楼2013-08-30 16:33:57
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sars37

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引用回帖:
8楼: Originally posted by 小鞋匠126_ at 2013-08-30 10:08:31
加大反应体系到40ul,把你的各个反应液同比例扩大2被就行了。你的模版量太少了,我们提出质粒500ng/ul 都要切2-3ul。酶切不是说时间越长越好,建议考虑5小时,太长容易吧载体切碎,太多切不开。

怎么乱码了。。你好,昨天我用40ul体系酶切,因为T质粒是5000ng/ul左右,PCDNA是800ng/ul左右,所以我取稀释后的T质粒2ul和PCDNA2ul,加酶2ul进行酶切,切了大概4小时这样,跑电泳发现T质粒的条带很弱,PCDNA的条带虽然亮,但是条带都是碎的,是不是被切碎了?好无助,求解救。。
10楼2013-08-30 16:38:14
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