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最近做回收胶浓度低,请大家来看看我的实验步骤是不是有问题。
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1 制备1%浓度未加EB的琼脂糖凝胶,大孔胶。将目的基因产物20μL加入孔中,若有多个目的基因,中间要空一个上样孔。 2 电泳结束后,放入EB染色液中染色10min。 3 在紫外灯下将目的条带切下,尽量不要切到多余的胶。将切下的目的条带的胶放入1.5ml EP管中。 4 空管事先称好重量,装胶后称重,得出胶重,按照QIANGEN试剂盒说明,提取目的基因。 5 目的基因片段在100—1000bp之间,加入三倍体积QXI试剂,即胶重0.1g,则QXI加0.3ml。 6 加入QXII试剂10ul,振荡30s。QXII在加样之前要充分振荡。 7 将加好样的EP管放入50℃水浴锅中,以溶解胶结合DNA,总共10min。需要每2min振荡1次,共5次。并观察颜色是否仍为黄色。 8 室温离心,13000rpm,30s,枪吸掉上清液。 9 加500μLQXI buffer 清洗,振荡,离心,室温,13000rpm,30s。枪吸掉上清液。 10 加500μL PE buffer 清洗,振荡,离心,室温,13000rpm,30s。枪吸掉上清液。 11 重复用 PE buffer清洗一次。吸净上清液,室温干燥至沉淀变白。 12 加15μL 灭菌ddH2O,振荡,混匀,室温放置5min。 13 离心,室温,13000rpm,30s,将上清移至新管中,即得提纯的目的基因. 再请教一下,如果要回收胶的话,做胶的TBE需要用EDTA调PH吗? 还有一个问题是,T4连接之后,在转化到感受态细胞之前,是不是要有一个酒精沉淀DNA的步骤? [ Last edited by sars37 on 2013-7-24 at 15:19 ] |
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