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西瓜猪1007

铁虫 (初入文坛)

[求助] 测胡萝卜多酚氧化酶遇到的问题

前阵子测胡萝卜多酚氧化酶活的时候遇到了如下问题:
1. 当我把酶液和底物混合在比色皿中以后,一开始吸光值正常的慢慢变大,再反应一会,吸光值逐渐变小,发现反应液开始分层。请教为什么反应液会分层。。。好纠结。。。
2. 实验室没有冷冻离心机,提取酶液的时候不冷冻离心会怎么样。。。
3. 看文献人家做实验会加PVP,这个东西的作用到底是什么?防止PPO氧化?每次做实验加PVP以后,反应液一旦混合颜色就好白好白。。吸光值太大了。。。

我的反应体系是0.5ml酶液+3ml底物(0.5M邻苯二酚溶于pH6.5 0.2M的磷酸缓冲液)

2013-04-13 17.04.57.jpg
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小毛孩24

专家顾问 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
西瓜猪1007: 金币+2, 有帮助 2013-04-27 10:48:02
PVP是为了去除材料中的多酚,多酚氧化会产生颜色影响测定,通常在测定植物性样品时会加
4楼2013-04-24 16:29:47
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Alexalex19

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
可能是多酚氧化酶与底物反应了,造成该波长下底物产生的吸收减小所致,有前辈们说侧吸光度操作要在数秒内完成。愚见仅供参考
2楼2013-04-23 17:40:24
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user59888

金虫 (文坛精英)

宫创始人 ------小妮

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
1. 粗酶液的制备
称取马铃薯块茎5g于研钵中,加入0.5g 不溶性聚乙烯吡咯烷酮(事先用蒸馏水浸洗,然后过滤以除去杂质)和100ml 0.1mol•L-1pH6.5磷酸缓冲液,磨成匀浆,用几层纱布袋过滤,滤液加入30%饱和度硫酸铵,离心除沉淀,上清液再加硫酸铵使达60%饱和度,离心收集沉淀。将所得沉淀溶于2~3ml 0.01mol•L-1 pH6.5磷酸缓冲液中,即为粗制酶液。
2. 活性酶的测定
在试管中加入3.9ml 0.05 mol•L-1 pH5.5磷酸缓冲液,1.0ml 0.1 mol•L-1儿茶酚在37℃恒温水浴中保温10min ,然后加入0.5ml酶液(可视酶活性增减用量),迅速摇匀,倒入比色杯内,于525nm波长处以时间扫描方式,在1~2min内测定吸光度变化(A)值。
五、酶活性的计算
以每min内A525值变化0.01为1个酶活力单位,按下式计算多酚氧化酶的活力和比活性。

A 酶提取液总量(ml)
酶活力(0.01A•min-1)=———————×———————————
0.01×反应时间 测定时酶液用量(ml)
A 酶提取液总量(ml)
酶的比活性(0.01A•g-1Fw•min)=—————————×——————————
0.01×W×反应时间 测定时酶液用量(ml)

公式中:A — 为反应时间内吸光度的变化值;W为样品鲜重(g)。你按这个试一试,不行在交流
此人已死,没烧纸的半夜出来喝酒
3楼2013-04-23 22:37:36
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小毛孩24

专家顾问 (职业作家)

【答案】应助回帖

离心机在离心的过程中温度会升高,而酶容易失活,如果不用冷冻离心机,测得的酶活可信度不高,会比真实值低。
如果所在的实验室没有冷冻离心机,可以找实验中心或者其他实验室借用。
5楼2013-04-24 16:33:11
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