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宝贝猪301

木虫 (正式写手)

[求助] 急!!!黄酮苷过LH-20凝胶柱的相关问题!

小弟需要分离纯化几种黄酮苷,这几种黄酮苷挂有一个或两个糖。

现有几点疑问:

1、纯甲醇和50%甲醇谁的洗脱能力强?

2、选用什么洗脱剂最合适?

3、之前用过50%甲醇洗脱,整个柱子都变黄了,仅仅洗脱下来部分物质。今天尝试了纯甲醇洗脱,柱头3cm为白色,其余部分也是全部变黄,同样仅仅洗脱下来部分物质。两次均是大部分物质挂在柱子上洗不下来!有什么好的办法么?!

4、有没有其它可以分离这种大极性黄酮苷的办法?!(PS:条件有限,没办法用制备)

望各位大神给予指导!

[ 来自科研家族 Natural Products家族 ]
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宝贝猪301

木虫 (正式写手)

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3楼: Originally posted by wm0629 at 2013-04-01 07:56:45
实验室一般都用纯甲醇作为流动相,上完样后在柱子上饱和4-6小时,然后用纯甲醇洗脱,把流速开到最大,柱子上的东西最好一天走完,这样柱子就不会有吸附。一般走完柱子后柱头会有变色的现象,不过没关系,你可以把那 ...

请问你们上的柱子是凝胶柱,还是普通的硅胶柱?

我上样后仅饱和了十几分钟,会不会有影响?

流速会对分离效果有影响吗?是不是说柱子越高、流速越慢,分离效果就越好?

纯甲醇洗脱后,柱子变黄;1%NaOH冲柱可以洗去吸附残留的物质。是否就说明相对LH-20柱来说,水的洗脱能力比纯甲醇强
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4楼2013-04-01 10:34:31
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宝贝猪301

木虫 (正式写手)

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9楼: Originally posted by 快乐虫 at 2013-04-02 08:37:27
甲醇的洗脱能力肯定比50%甲醇强,结合个人分黄酮的经历,认为你的问题有三点:1、柱子没装好,大分子物质被阻碍向下走。2、上样量太多。3、洗脱时间过长,形成了死吸附。

确实如此,之前是因为洗脱时间过长,造成了严重的死吸附!
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10楼2013-04-02 14:40:14
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宝贝猪301

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7楼: Originally posted by wm0629 at 2013-04-01 17:00:15
过的是凝胶柱SepdeLH-20,饱和时间有点短,可能都没太吸附住就下来了。流速问题没研究过,一般都是全速流,柱子装的别太高,这样东西下来的慢,而且容易死吸附。...

嗯,之前两次柱子装的都太高了,而且流速很慢,造成了死吸附!
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11楼2013-04-02 14:41:00
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宝贝猪301

木虫 (正式写手)

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12楼: Originally posted by hnjdd at 2013-04-02 20:14:46
为什么一定要用凝胶柱的?...

  亲,不是一定要用,而是因为有,所以用!
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13楼2013-04-02 23:11:20
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14楼: Originally posted by huaqiangliu at 2013-04-03 10:19:53
只选有的,不选对的。只选贵的,不选对的。

15楼2013-04-03 10:56:23
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宝贝猪301

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引用回帖:
14楼: Originally posted by huaqiangliu at 2013-04-03 10:19:53
只选有的,不选对的。只选贵的,不选对的。

请恕小弟无知,何为对的?
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16楼2013-04-03 11:00:39
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17楼: Originally posted by 787491498 at 2013-04-20 16:11:16
请问您的径高比是多少?上样量又是多少?有没有标准?...

我要分的几种物质的分子量相差不是特别大,所以现在放弃了凝胶,尝试聚酰胺!

之前我请教过研博做天然产物的老师,他说他读博时分过黄酮苷。正丁醇相先过硅胶柱(柱子要粗,径高比为1:3~1:5,加压)斩断,再用聚酰胺去细分(聚酰胺是根据羟基吸附分离,效果好的话可以拿到比较纯的单体),最后用凝胶亦或是反相去纯化!

我不知道你分的是黄酮还是黄酮苷,如果你要分的东西水溶性不好,那么切记把柱子装的太高,不然很容易结晶析出,洗都洗不下来。所以条件允许的话,最好加压。

提醒一下,凝胶(分子筛)不能加压的,不然会破坏结构,凝胶就废了。
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18楼2013-04-20 19:35:48
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引用回帖:
17楼: Originally posted by 787491498 at 2013-04-20 16:11:16
请问您的径高比是多少?上样量又是多少?有没有标准?...

如果采用的是湿法上样,建议先将样品过滤下,以免把凝胶柱头堵了,流速也就慢了...

至于你问的径高比,上样量,不好意思,标准的话,我也不是太清楚,呵呵...
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19楼2013-04-20 19:39:24
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