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blue native ,SDS0-PAGE双向电泳
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我提取取得类囊体膜,应该加什么样品缓冲液,如何才能长期保存用于下游的blue native。跑完blue-native,再跑SDS-PAGE双向电泳银染后,胶该如何保存长期以便上质谱打点(因为上质谱需要排队,可怜呀。。。 )。 |
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cicelyzh
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【答案】应助回帖
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感谢参与,应助指数 +1
gyfgood: 金币+5, 很好的回答! 2012-11-02 23:33:11
swj11123: 金币+25, ★★★很有帮助, thank you 2012-11-03 11:28:13
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| 提的内囊体膜定量后分装,液氮冻,保存在-80°C,尽量不要反复冻化。做BN-PAGE时取出,冰上操作,增溶上样。双向电泳的胶短期保存在水里,当然容易污染和损坏。长期保存可以制成干胶。需要做质谱时用刀挖点,rehydrate后可以进一步蛋白酶消化上质谱。 |
3楼2012-11-02 12:14:34
4楼2012-11-03 11:32:30
cicelyzh
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5楼2012-11-04 03:34:23
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以下是我提取类囊体膜的方法,但我不知道他最终的得到的类囊体膜-80度保存前是在islation buffer 重悬保存还是直接用沉淀保存 10g叶片用PBS缓冲液(137mM的NaCl,2.7mM KCl,10mM Na2HPO3,2mM KH2PO3,PH 7.4)浸洗后,剪成碎片,加入3倍体积预冷的isolation buffer(PBS缓冲液+330mM蔗糖),用预冷的杵和研钵研成匀浆。匀浆液通过两层尼龙布过滤,2000g,4°C,离心5min。弃去上清液,沉淀用isolation buffer重悬。重悬液500g,4°C离心20s,去除沉淀。上清液2000g, 4°C,离心5min.所得沉淀即为叶绿体沉淀。叶绿体沉淀重悬于isolation buffer以便进行低渗溶胀后,3000g, 4°C,离心10min以分离得到类囊体膜沉淀。得到的类囊体膜沉淀要么立即使用,或者是在液N2冷冻后分装在-80°C后备用。叶绿体含量用80%丙酮法-分光光度计法测定测定。 |
6楼2012-11-04 09:29:16










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