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wangyuanji

银虫 (小有名气)

[求助] 在药动试验中,标准曲线及稳定性考察的几个问题

1)在药动试验中,稳定性考察通常会设计室温、冷藏(4℃)、冷冻循环3次(-20℃)、冷冻保存30天等等,在这几种环境条件下,设计高中低三个浓度,每个浓度制备3~5个样品,按照确定的前处理方法处理样品,测定。
我的问题是:稳定性考察的结果,是以保存后(冷冻循环3次或者冷冻30天)测得的浓度与初始时样品(分别设计高中低、每个浓度制备3~5个样品)浓度比较,考察浓度变化,以RSD表明样品经过各种环境放置后是否产生变化,怎么比较呢?比如低浓度,3~5个样品,冷冻30天后,3~5个样品,怎么比较得出稳定性与否呢(RSD)?稳定性整个做下来,比如设计三种条件(室温、冷冻循环3次、冷冻保存30天),每个条件高中低三个浓度,每个浓度3~5个样品,那一次稳定性试验样品数就是27~45个,不知道我计算的对不对?
2)在做了几只大鼠的药动试验后,发现有的大鼠血浆中药物浓度超出了标准曲线的范围,那么,此刻是应该再建立一条标准曲线,来适应超出标曲的浓度呢,还是在原来标准曲线基础上,再加一到两个浓度点呢?
3)在药动试验中,是先进行方法学考察(标准曲线、精密度、提取回收率、稳定性、准确度、检测限、定量限),还是先在大鼠体内进行预实验?方法学考察是否有一个先后顺序呢?如何避免在实际样品(大鼠)测定时,样品浓度超出标准曲线浓度范围的情况?
问题有点多,还请各位老师多多指教!
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wm彼岸花

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
wangyuanji: 金币+2, ★★★很有帮助, 谢谢你的回答! 2012-09-28 20:18:08
将样品加入血浆中考察方法学,而不是用实际样品,大鼠、人个体差异都很大,不能用一个人的样品来代替其稳定性,试验中先做方法学,在稳定性考察中0时的稳定性数据共用,其他的与此比较。此外,药动学先做方法学,再做预实验,试想如果方法都不可靠,那预实验得出来的数据怎么会可信呢
12楼2012-09-28 15:48:40
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阿娇阿娇

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
wangyuanji: 金币+2, ★★★很有帮助, 谢谢你的回答! 2012-09-26 11:45:30
楼主你好,我现在也在做药代,也有很多不明白的地方,希望能跟你交流一下,关于你的问题我有一些建议和疑惑,谢谢回答
(1)稳定性考察,是不是将药物加到空白血浆中配置各种浓度来检测,而不是取血后的样品放置4度或者30天等等再检测?
(2)每次实验时候要做随行标准曲线,如果你的浓度超过了标准曲线范围,建议做稀释,你可以先用稀释液做一个倍比稀释,看看结果如果不受稀释影响,检测时候就可以将样品进行稀释。这是我看的文献上面有这样做的
(3)应该是先做方法学考察的,只有这种方法满足药代条件了,才可以做体内的血药检测,方法学应该没有先后顺序之分。
     可能我回答的不专业,希望与楼主共同学习
2楼2012-09-26 10:23:39
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wangyuanji

银虫 (小有名气)

谢谢你的回答,下面是我的理解:
1)稳定性考察,是将药物加入空白血浆中制备成高中低浓度,按前处理方法处理,检测;
2)你所说的稀释液,是空白血浆还是最终进液相测定所有的溶剂?比如甲醇?
3)先做方法学,就很可能出现实际样品测定时,超出标准曲线的问题;另外,方法学考察,我觉得提取回收率是否应该先做?在实际操作中,是应该有一个先后顺序在里边的,比如,提取回收率(绝对回收率),检测限定量限,线性范围,准确度(相对回收率),稳定性,等。
心态比能力重要
3楼2012-09-26 11:44:48
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阿娇阿娇

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

我说的稀释液,如果你的样品是血浆,就用空白血浆稀释就行了。
我是用的PBS,稀释样品的,跟空白血浆稀释之后差异不大,所以就用PBS代替血浆了。不太懂液相的东西,我是用免疫方法,做的ELISA
4楼2012-09-26 12:03:35
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