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南方科技大学公共卫生及应急管理学院2025级博士研究生招生报考通知
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ss000qq

金虫 (正式写手)


[求助] 胞内酶不能用超声破碎怎么办?

大家好:
       最近做实验遇到一个问题,就是我重组的蛋白属于胞内酶,但最近诱导破碎菌体再跑SDS-PAGE蛋白胶发现,没有目的蛋白,而用诱导后的菌液直接上样的则有目的条带,难道我这个酶太容易变性?破碎完一经离心,变性的蛋白随之沉底,而留下上样的上清则没有东西?
       我用的是T7表达载体,不知道和这种现象有没有关联?不知大家有没有遇到过这种情况啊?急求解答!谢谢
       备注:破碎条件我采用的是P=50%,破2秒,停5秒,总时间1分钟时拿出冷却。还有一点是我的蛋白的诱导表达量不是很高,因为还未经诱导条件的优化。使用IPTG诱导的,宿舍菌为BL21.
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AnaSequence

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
西瓜: 金币+2, 鼓励交流 2012-04-01 17:26:18
ss000qq: 金币+1, 有帮助, 谢谢 2012-04-06 15:34:02
引用回帖:
13楼: Originally posted by ss000qq at 2012-03-04 20:11:43:
谢谢,不过我的表达量很低呢,条带不是很明显,包涵体是不是应该不会形成啊?不是说表达量过高过快才容易形成包涵体的嘛?我还没有做诱导条件的优化,现在只是诱导温度28℃,IPTG终浓度0.6mM/L。你说的那三步我今 ...

你把破胞离心得到的沉淀按照包涵体的处理方式处理了,再跑SDS-PAGE看,就知道表达是高还是低了,形成包涵体后,所表达的蛋白基本都在包涵体了,你还没把包涵体怎么样,只看上情,当然看不到高表达的蛋白条带了。
15楼2012-04-01 08:26:32
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linsaijun

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
很可能是形成包涵体了。
NopainNoGain!
2楼2012-02-29 21:25:05
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whb21

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
建议你做些对照试验,诱导后菌液离心上清和沉淀分别跑一下胶,看看是否蛋白全在沉淀中,如果那样的话就比较麻烦,还得进行包涵体变性复性...
3楼2012-03-01 09:53:10
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ss000qq

金虫 (正式写手)


引用回帖:
: Originally posted by whb21 at 2012-03-01 09:53:10:
建议你做些对照试验,诱导后菌液离心上清和沉淀分别跑一下胶,看看是否蛋白全在沉淀中,如果那样的话就比较麻烦,还得进行包涵体变性复性...

请问在我做的这个试验中为什么会形成包涵体啊?是哪个环节造成的啊?谢谢
4楼2012-03-01 13:57:05
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