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【求助】 关于原核表达【有效日期截止:2011年2月28日】
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我诱导表达了一个38KD左右的可溶性蛋白,使用pCold1-4作为表达载体,以BL21(DE3)作为宿主。现存在以下问题,敬请各位大侠帮助! 1.按照说明书,我在OD600=0.6-0.8时加入IPTG,15℃诱导过夜。诱导条件已经过优化,IPTG浓度1mM,15℃诱导24小时为最佳。以空载体作为对照,诱导过夜后,SDS-PAGE电泳后,无目的蛋白出现,并且和对照没有什么区别。但是拿得到的蛋白做活性分析的时候发现有活性,Why? 2.目的蛋白的等电点为7.34,所用的buffer是Tris-HCl (pH 7.5) ,是否会造成在E.Coli细胞破碎过程中目的蛋白的沉淀? 3.若是用带有His-tag的pCold2,纯化采用的是His TALON Gravity Columns Purification Kit,该试剂盒中的所有buffer的pH都是7.34。问题是蛋白不挂柱,在上样之后立马掉下来,是否和buffer的pH值有关? 4.若是组氨酸标签被包裹在蛋白质内部,该如何纯化,在哪步加入8M的尿素? [ Last edited by swallow2007 on 2011-2-8 at 12:41 ] |
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swallow2007(金币+1):谢谢参与
swallow2007(金币+44): 谢谢啊,我也想到了这一点儿,将缓冲液的pH调整到8.0,依然和对照没什么区别,下一步打算用8M的尿素,谢谢你! 2011-02-09 08:45:09
swallow2007(金币+1):谢谢参与
swallow2007(金币+44): 谢谢啊,我也想到了这一点儿,将缓冲液的pH调整到8.0,依然和对照没什么区别,下一步打算用8M的尿素,谢谢你! 2011-02-09 08:45:09
| 如果楼主表达的是可溶性蛋白,一般而言,所需要的目的蛋白在溶液中,由于目的蛋白的等电点在7.34左右,建议所用的缓冲液的PH值要远离该等电点,即用PH7.5的缓冲液不好,可以考虑PH6.5左右或8.0以上,不然目的蛋白在PH7.5时容易沉淀,会导致目的蛋白沉淀从而损失较多的目的蛋白,对以后的纯化造成困难,如果用亲和层析纯化,一开始也可以用8M尿素溶解蛋白的,也可以考虑其它纯化方式,如离子交换,疏水层析等 |
4楼2011-02-08 16:43:25
6楼2011-03-31 10:41:42










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