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【求助/交流】在TEM电镜之前 如何处理细菌样品已有1人参与
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| 之前照的是 SEM,但是觉得TEM更清楚,所以希望诸位有经验的同学赐教~~是要用戊二醛吗? |
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由于电镜电子束穿透能力的限制,必须把标本切成厚度小于0.1um以下的薄片才适用,这种薄片称为超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。 在透射电镜的样品制备方法中,超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似,需要经过取材、固定、脱水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步骤。 一 取材的基本要求 组织从生物活体取下以后,如果不立即进行适当处理,会由于细胞内部各种酶的作用,出现细胞自溶现象。此外,还可能由于污染,微生物在组织内繁殖使细胞的微细结构遭受破坏。因此,为了使细胞结构尽可能保持生前状态,必须做到快、小、准、冷: (1).动作迅速,组织从活体取下后应在最短时间内 (争取在1分钟内) 投入2.5%戊二醛固定液。 (2).所取组织的体积要小,一般不超过1mm×1mm×1mm。也可将组织修成1mm×1mm×2mm大小长条形。因为固定剂的渗透能力较弱,组织块如果太大,块的内部将不能得到良好的固定。 (3).机械损伤要小,解剖器械应锋利,操作宜轻,避免牵拉、挫伤与挤压。 (4).操作最好在低温(0℃~4℃)下进行,以降低酶的活性,防止细胞自溶。 (5).取材部位要准确。 取材方法:将取出的组织放在洁净的蜡版上,滴一滴预冷的固定液,用两片新的、锋利的刀片成“拉锯式”将组织切下并修小,然后用牙签或镊子将组织块移至盛有冷的固定液的小瓶中。如果组织带有较多的血液和组织液,应先用固定液洗几遍,然后再切成小块固定。 |

4楼2011-01-10 20:19:47
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2楼2011-01-09 13:14:48
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透射电镜生物样品制备步骤 一.取材: 组织块小于1立方毫米 二.固定: 2.5%戊二醛,磷酸缓冲液配制固定2小时或更长时间。 用0.1M磷酸漂洗液漂洗 15分 三次 1%锇酸固定液固定 2-3小时 用0.1M磷酸漂洗液漂洗 15分 三次 三.脱水: 50%乙醇 15-20分 70%乙醇 15-20分 90%乙醇 15-20分 90%乙醇 90%丙酮(1:1) 15-20分 90%丙酮 15-20分 以上在4度冰箱内进行 100%丙酮 室温 15-20分三次 四.包埋: 纯丙酮+包埋液(2:1)室温 3-4小时 纯丙酮+包埋液(1:2)室温 过夜 纯包埋液 37度 2-3小时 五.固化: 37度烘箱内 过夜 45度烘箱内 12小时 60度烘箱内 24小时 六.超薄切片机切片 50-60 nm 七.3%醋酸铀-枸橼酸铅双染色 八.透射电镜观察。拍片 |

3楼2011-01-10 20:14:18













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