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【求助/交流】膜蛋白(膜酶)的分离纯化
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liaozi
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[交流]
【求助/交流】膜蛋白(膜酶)的分离纯化
最近在做链霉菌细胞膜关联酶的提取,发现酶活一直好低啊,郁闷,过了DEAE后所有的峰的没货性了
。
我提粗酶的步骤是:菌体1:3悬浮,400W破10min,12000r/min冷冻离心30min,去上清,沉淀用含1%TritonX-100的缓冲液悬浮,搅匀后静置1h,然后12000r/min冷冻离心30min,取上清液为粗酶液,测酶活(很低
)
想请教各位有知道有提取膜酶的好方法吗?或者是实例?
用1%TritonX-100溶解膜酶是不是容易使酶失活啊?
万分感谢!
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1楼
2010-01-13 17:11:04
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wwyy0818
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1949stone(金币
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1-13 23:04
你的膜蛋白要是跨膜结构只有1-4个话,你可以试试PIERCE的膜蛋白提取试剂盒,如果大于4个,则超高速离心。。。
膜蛋白提取很困难,自己多摸索摸索
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2楼
2010-01-13 17:53:50
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hhwang
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★ ★ ★
小木虫(金币
+0.5
):给个红包,谢谢回帖交流
1949stone(金币
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):
1-13 23:04
把细胞膜破碎同时保酶活很重要,但是挺难的
而且破碎的细胞膜常常会自组装,把酶重新包裹,所以这又是个问题。
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3楼
2010-01-13 18:54:39
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guoenwen
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性别: GG
专业: 微生物生理与生物化学
膜蛋白是很难做的,建议用温和的方法破碎细胞,还有不要用TritonX-100,这个东西会和膜蛋白作用的,使很多膜蛋白溶解掉,估计不利于与膜蛋白关联酶的提取,
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4楼
2010-01-14 20:44:31
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t85434577563
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专业: 生物化学
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+0.5
):给个红包,谢谢回帖交流
超声破碎对于霉菌之类的微生物效果很差,可以改成液氮研磨,以前我们实验室也做过根霉的膜蛋白纯化就是用的这种方法,另外表面活性剂的使用,最好做个优化,譬如种类和浓度,最后溶解膜蛋白的时候,最好低温下缓慢搅拌,不要静置,这样效果要好
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5楼
2010-01-15 08:41:14
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★
小木虫(金币
+0.5
):给个红包,谢谢回帖交流
1%TritonX-100的PH为8.0~8.5,而你的酶在这个环境下有无影响啊,最好做一下检测,因为酶受PH影响是很大的
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6楼
2010-01-17 13:16:47
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虫号: 915164
注册: 2009-11-28
专业: 疫苗学
★
小木虫(金币
+0.5
):给个红包,谢谢回帖交流
还有就是,菌体混悬液再稀点,1:10或15(看黏稠程度),离心最好分布进行,4500rpm到7500rpm最后在用12000rpm。菌体溶解多糖、蛋白及外膜蛋白一般都必须分步进行的。
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7楼
2010-01-17 13:26:44
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liaozi
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谢谢楼上各位的建议
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2010-01-17 15:33:25
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Originally posted by
guoenwen
at 2010-1-14 20:44:
膜蛋白是很难做的,建议用温和的方法破碎细胞,还有不要用TritonX-100,这个东西会和膜蛋白作用的,使很多膜蛋白溶解掉,估计不利于与膜蛋白关联酶的提取,
那什么方法破碎比较温和且效果较好呢?
我看资料一般都是用TritonX-100来溶解(抽提)膜蛋白的,还有什么更好的方法能将膜蛋白从细胞膜上溶解下来呢?
期待指教,谢谢(*^__^*)
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9楼
2010-01-17 15:38:36
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liaozi
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Originally posted by
hhwang
at 2010-1-13 18:54:
把细胞膜破碎同时保酶活很重要,但是挺难的
而且破碎的细胞膜常常会自组装,把酶重新包裹,所以这又是个问题。
破碎细胞同时保持酶活性很重要是毋庸置疑的,那就是要在缓冲液中加蛋白酶抑制剂和酶保护剂了?
我看用的多的蛋白酶抑制剂有PMSF、保护剂有DTT,他们是提所有酶都通用的吗?效果好吗?
期待指教,谢谢(*^__^*)
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10楼
2010-01-17 15:52:39
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