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先上图 【电脑端图片上传的按键点不了啊,等等手机发到二楼】 然后说一下背景 用的是15%的分离胶,上层是彩色胶但是不具备浓缩作用,电泳电压是100v,电泳缓冲液都是新配的,胶两端是空白,中间从左到右分别是marker(10~180kb),BSA标准蛋白(0.125mg/ml),样品1(0.65mg/ml),样品2(1.28mg/ml),样品3(1.19mg/ml),样品4(约2.3g/ml),样品5(0.128mg/ml)marker,蛋白含量均用Bradford蛋白浓度测定试剂盒测定,marker的上样量为6μl,橙红色条带为70kd,样品及空白的上样量为10μl。 样品1~4是从某中药动物药的冻干粉中提取的,提取方法为石油醚破碎脱脂后,挥尽石油醚,然后加入0.9%NaCl溶液超声破碎提取,提取后离心取上清液为总蛋白溶液,-80℃保存,也就是说上样的样品保存液为0.9%NaCl溶液。样品5则是某种动物分泌的液体。 跑电泳前,5xloading buffer10μl+样品和空白40μl混匀,然后煮5~10分钟,放凉后上样跑电泳。跑完电泳后,先在摇床上用蒸馏水把胶上没跑完的那些loading buffer部分洗掉了,大概洗了一个多小时,洗到胶上只有marker跑过的痕迹(其实不知道这步做的对不对,只是发现蒸馏水洗的时候可以洗掉就洗了),然后用考马斯亮蓝快速染色液在摇床上染色(不用脱色,染色时间大概2小时左右)。 介绍完了情况,说一下问题。 发现电泳图有以下几个问题: 1. Marker蹿到了别的条带 在网上查说是盐离子会导致蹿带,但是marker是没有盐离子的呀,难不成样品中的NaCl也会导致蹿带?而且都是往左边蹿的,这两个条带上的样都没有NaCl。 2.颜色很浅,染色效果不好 看人家的染的都是那种深蓝色效果很好 3.样品1~4的条带整个都是蓝色的,条带不明显 是不是蛋白保存溶液的问题?这种整个条带都是蓝色的是不是说明蛋白降解了。 求各位大神解答,希望大家多提建议,谢谢! |
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