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重组酵母表达问题 已有1人参与
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![]() ![]() 各位大佬,小弟目前正在用毕赤酵母做组成型的表达菌株,出发菌株用的GS115(SMD1168、X33等也试过),质粒载体用的pPIC9K,方法是用GAP启动子基因序列将9K上的AOX1启动子序列替换掉(从SacⅠ酶切位点开始到BamHⅠ结束全部替换),延用a-MF信号肽,后面紧跟着我的目的蛋白,构建后选用SalⅠ或BglⅡ酶进行线性化电转至GS115酵母中,开始做时SDS电泳,以及WB检测都成功了,液相也跑了,各种检测结果都是正确的。现在出现了一个问题,构建后的相同一管的质粒无论用什么酶线性化,或者转至哪一种酵母,经过抗性筛选再转至G418平板后挑取的单克隆都无法表达目的蛋白了。目前最近的一次实验尝试了直接挑取MD平板上的,和转涂至G418上的菌株,发现MD上的能够表达,而G418上的单克隆无法表达。望各位前辈大佬不吝赐教!拜谢各位了 |
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2楼2019-11-28 13:33:48
3楼2019-11-30 01:32:49
15845856241
新虫 (小有名气)
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- 专业: 生物化学
4楼2020-12-18 15:03:39
【答案】应助回帖
| 您好,我想来询问一下毕赤酵母再MD平板上筛选的问题。我用的是ppic9k和gs115菌株,也差不多做了5次电转了,但是涂在MD平板上就是不长斑,转的ppic9k空载也不长,不知道是哪里出了问题,所以想来问一下你这个问题最后解决了吗?有什么别的方法?我是gs115到od=1.0左右就制备感受态了,用的pme I线性化载体,用乙醇沉淀法回收DNA,然后转了大概5ug的载体进感受态细胞,电转条件是1500V,25μF,200Ω,2mm电转,电转过后显示4.9ms和1491V,感觉都挺完美的但是就是在MD平板上长不起来。我试过三种方法,一个是电转后加山梨醇后马上涂板,第二种是加完山梨醇30度静置1h后涂板,第三个是静置1h后放去30℃摇床复苏1h后再涂板,这三种方法都没能在MD平板上长起来,所以我想来请教一下,感谢! |
5楼2024-11-03 18:02:15











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