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zy晨曦

新虫 (小有名气)

[交流] 自己的初次蛋白纯化实验 已有2人参与

通过上一次的蛋白纯化,发现酶活的回收率低(目前没有着重考察纯度的问题),所以今天通过降低ph来考察酶活的回收率的问题。通过一天的不间断的实验,发现降低ph能快速洗脱目的蛋白,但是纯化还没有测定。先说说具体的步骤吧。
首先调整了弱阴离子树脂的ph为7.0,还是将树脂倒出然后直接调ph的方法,粗糙而又快速的方法。
调整酶液的ph有点问题,因为利用3M盐酸调整会出现浑浊,主要是因为强酸会导致局部ph过低,酶变性了。所以我利用0.05m的磷酸氢二钾调整ph。成功。
上柱300ml,比上次的柱子上的酶液体积多了100ml,但是酶活略微低于上一个酶液。总体算来,两者的上样量差不多。但是洗脱规律却差了很多
0.2m氯化钠就能洗脱出30%的目的蛋白,0.3m氯化钠在第一个0.5BV时就洗脱出45%的目的蛋白,虽然心里在怀疑这个ph不适合,但是毕竟洗脱出来的酶活高,浓度大,接着0.3M洗脱的第二个0.5BV就没有酶活了,说明洗脱过快。如果可以下次应该改用0.25M洗脱了。接下来的0.4M就没有洗脱出来蛋白。基本在0.3M就洗脱出来了全部的蛋白,但是还是有20%左右的酶活不知道在哪里?酶在和我玩捉迷藏,而树脂一直帮着它,我是孤家寡人了。
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日事日毕,日清日高
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璧月

捐助贵宾 (正式写手)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
没弄明白为什么把填料弄出来换ph环境?离子交换两种洗脱方法,盐洗脱和ph洗脱。盐是改变环境电导,ph是改变蛋白带电。直接往柱子里泵缓冲液就可以的,为什么要拆出来呢?

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3楼2016-06-09 14:22:51
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hc-material

专家顾问 (职业作家)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
描述的好有意思。
你用的Q的还是DEAE的。
建议清洗直接用0.1M的氯化钠,洗脱用0.35M的氯化钠。PH就用PH7.0的,洗脱的快了是好事啊。另外缓冲液中加20%甘油,可防止酶失活,另外层析过程尽量在低温4度环境中进行,祝顺利

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2楼2016-06-07 10:09:46
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zy晨曦

新虫 (小有名气)

送红花一朵
引用回帖:
2楼: Originally posted by hc-material at 2016-06-07 10:09:46
描述的好有意思。
你用的Q的还是DEAE的。
建议清洗直接用0.1M的氯化钠,洗脱用0.35M的氯化钠。PH就用PH7.0的,洗脱的快了是好事啊。另外缓冲液中加20%甘油,可防止酶失活,另外层析过程尽量在低温4度环境中进 ...

谢谢您的回复,你的建议对我的实验很有帮助,目前我只尝试了7.5和7.0洗脱,还想着再调低pH观察洗脱情况。你觉得有必要再调低ph吗?
日事日毕,日清日高
4楼2016-06-11 20:03:55
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zy晨曦

新虫 (小有名气)

送红花一朵
引用回帖:
3楼: Originally posted by 璧月 at 2016-06-09 14:22:51
没弄明白为什么把填料弄出来换ph环境?离子交换两种洗脱方法,盐洗脱和ph洗脱。盐是改变环境电导,ph是改变蛋白带电。直接往柱子里泵缓冲液就可以的,为什么要拆出来呢?
...

您好!谢谢您的回复,我现在主要是利用盐洗脱,因为现在使用的是弱阴离子交换树脂,缓冲液是7.5的磷酸盐缓冲液,最初是想着利用0.5M的磷酸盐缓冲液直接冲柱子调节ph,我是怕磷酸根离子结合到树脂柱上。
日事日毕,日清日高
5楼2016-06-11 20:07:00
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