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ErtLee

金虫 (小有名气)

[求助] 小鼠脾细胞Th流式CD4染色极少怎么破… 已有2人参与

感觉做Th流式CD4+一直非常少,求大神讲解,下面是大概的流程…
淋巴细胞分离液处理的Balb/c正常小鼠脾细胞,大概1*10^6/ml,24孔板每孔1ml做刺激: PMA 50ng/ml, Ionomycin 1ug/ml, Golgistop 照BD说明书加的,刺激时间一般6~8h。第二天收了以后胞外染色、固定穿透、胞内染色。固定穿透用的是ebioscience的permeabilization buffer和fixation/ permeabilizaton concentrate,流式抗体都是ebioscience的(CD4,IL4, IFNr)。重复了几次下来都存在CD4+极少甚至染不上(0.5%以下,很多0.1%不到)。

请问这种染色效率是否正常?看到过一种说法是刺激物会引起CD4的表达量减少和内吞,这种情况在实验过程里应该怎么避免?CD3+CD8-作为CD4+的替代标记这种做法在小鼠细胞实验里是否能够得到认可?

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ghqiu09

禁虫 (正式写手)

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3楼2016-03-03 21:22:55
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徐州往事

铁杆木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

PMA刺激4小时以后CD4数量就开始下降,过夜培养数量会降的更低。如果必须过夜培养,可以利用CD3CD8反向射门来分析你所需要的细胞群。

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2楼2016-02-04 00:46:23
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ghqiu09

禁虫 (正式写手)

本帖内容被屏蔽

4楼2016-03-03 21:25:24
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ErtLee

金虫 (小有名气)

引用回帖:
3楼: Originally posted by ghqiu09 at 2016-03-03 21:22:55
我有个疑问,为什么需要用淋巴细胞分离也去分离?反正流式收的时候收的都是淋巴细胞,脾里面30%左右是T细胞,60%左右是B细胞,其他的细胞比较少。我虽然不做Th细胞,但是Treg那些我从来是直接破碎后过滤染色。

之前用是下游要顺便做ELISPOT,所以就一直都用了…

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5楼2016-04-01 13:58:13
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