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Meckett

新虫 (正式写手)

[求助] PMP单糖衍生化出现了问题但不知道是什么问题,求助大家!

“取盐酸氨基葡萄糖适量,精密称定,加水制成每1mL含5mg的溶液作为内标溶液。另取单糖对照品约5mg,精密称定,置10mL量瓶中,精密加入内标溶液0.5mL,加水适量使溶解并稀释至刻度,摇匀,吸取500μL,加0.5mol/L的PMP甲醇溶液与0.6mol/L的氢氧化钠溶液各500μL。混匀,70℃烘箱内衍生反应100mn,再加0。3mol/L的盐酸溶液1000μL,混匀,再用三氯甲烷洗涤3次,每次2mL,弃去三氯甲烷液,水层离心后,取上清液20μL,注入液相色谱仪。”
  以上步骤我严格参照文献来做。上个周六做起来没有任何问题,进了液相图也很好看。可是我上周日继续做其他几份单糖样品时,在烘箱内衍生结束冷却后,我加入一毫升盐酸后整个溶液就呈现蓝色,而之前做成功的样品加入盐酸后颜色是应该没有改变的。进了液相也见不到糖的衍生物吸收峰。
后来发现溶液的颜色变化是由ph导致的。求助各位大神,pmp衍生化后应该在怎样一个ph条件下进行氯仿的萃取以保证衍生产物不会被氯仿萃取掉呢?又或是我这个操作还有哪里有什么问题呢?求助求助!!!!!
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flora_5

木虫 (正式写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by Meckett at 2015-12-19 17:16:35
我问题已经解决了,不过还是谢谢你
...

那是什么问题?如何解决的呢?
4楼2015-12-19 21:23:50
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flora_5

木虫 (正式写手)

有可能是试剂的问题。
2楼2015-12-19 08:54:50
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Meckett

新虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by flora_5 at 2015-12-19 08:54:50
有可能是试剂的问题。

我问题已经解决了,不过还是谢谢你

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3楼2015-12-19 17:16:35
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Meckett

新虫 (正式写手)

引用回帖:
4楼: Originally posted by flora_5 at 2015-12-19 21:23:50
那是什么问题?如何解决的呢?...

目前看来可能是pmp量加得不够。貌似是这样,我今天重新做了一次,明天去看看液相图,如果没问题就在重做一次,还是没问题就算解决了吧

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5楼2015-12-20 00:07:59
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windy2016

金虫 (小有名气)

亲,请教下有没有遇到PMP衍生化后残留PMP太多的现象呀?我反应方法跟你差不多,但体积比较缩小了,但最近进液相时发现有一个很高很高的峰,对比PMP空白后猜测应该是多余的PMP试剂,可我也有用氯仿萃取三次呀(每次等体积氯仿涡旋震荡2分钟,离心一分钟,取不清),不知道是哪里出了问题……请亲指教下呀
6楼2016-01-06 20:34:22
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Meckett

新虫 (正式写手)

引用回帖:
6楼: Originally posted by windy2016 at 2016-01-06 20:34:22
亲,请教下有没有遇到PMP衍生化后残留PMP太多的现象呀?我反应方法跟你差不多,但体积比较缩小了,但最近进液相时发现有一个很高很高的峰,对比PMP空白后猜测应该是多余的PMP试剂,可我也有用氯仿萃取三次呀(每次等 ...

我印象不太清楚,我明天拍张我的液相图给你看看。

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7楼2016-01-07 22:37:45
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windy2016

金虫 (小有名气)

8楼2016-01-08 13:05:59
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Meckett

新虫 (正式写手)

引用回帖:
6楼: Originally posted by windy2016 at 2016-01-06 20:34:22
亲,请教下有没有遇到PMP衍生化后残留PMP太多的现象呀?我反应方法跟你差不多,但体积比较缩小了,但最近进液相时发现有一个很高很高的峰,对比PMP空白后猜测应该是多余的PMP试剂,可我也有用氯仿萃取三次呀(每次等 ...

三个分别是空白内标和核糖的衍生图谱,pmp是那个最高的2000多的峰,糖和内标的峰你可以调节量程看大小不影响的。
PMP单糖衍生化出现了问题但不知道是什么问题,求助大家!


PMP单糖衍生化出现了问题但不知道是什么问题,求助大家!-1


PMP单糖衍生化出现了问题但不知道是什么问题,求助大家!-2



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9楼2016-01-08 17:51:40
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windy2016

金虫 (小有名气)

我之前做的跟你差不多,但是PMP出峰是在最前面,今天我又重新做了下实验,残留PMP没那么多了,您这个看起来试剂残留也蛮高的勒,不会影响糖的分离吗?

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10楼2016-01-08 21:26:56
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