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NADH氧化酶的测定问题
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近日要测定NADH氧化酶酶活,由于以前没测过,所以根据文献上的方法进行测定,如下:对数期细胞离心,用磷酸钾缓冲液(pH=7洗一遍),超声,而后离心碎片去上清。500微升的反应体系:50mM的磷酸钾缓冲液(pH=7),0.3mM的EDTA,0.3mM的NADH。而后加入10微升的合适浓度的样品,在340nm处测定吸光度的减少。 我按照上述方法进行测定,只是把磷酸钾溶液换成了Tris-HCL(ph=7.8),但是发现吸光度没有变化,不知问题出在哪里,还望请教! 我第一次测酶活,有以下问题: 1是不是配溶液时都需无菌水 2NADH配好是不是要立即测,多长时间就失效了 3我的菌是革兰氏阳性菌(兽疫链球菌),超声一小时应该足够破碎了吧? 4测定酶活温度为30度,是不是温度对他的影响特别大,因为开始我想先试试,所以温度没有控制(主要我们实验室分光光度计没有温控装置,要去其它实验室用,麻烦),温度大概有20度,在此条件下测定没有变化。 希望大叫不吝赐教,我是新手,问题比较弱,希望大家给予支持! ![]() ![]() |
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3楼2008-03-18 10:14:48
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