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为什么膜蛋白不能盐析沉淀
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请问大牛,为什么膜蛋白的粗分离不能用盐析沉淀法啊?我搜索了各大浏览器,均没有发现用盐析发粗分膜蛋白的说法(大都用的超高速离心发)。小弟想知道其中原因何在?还是他们顾及到了后续的透析比较浪费非离子型去垢剂? PS: 最近小弟在提取一种含颜色标记的蛋白, 而且并不知道它是属于膜蛋白还是浆蛋白,但通过下一个实验我觉得它可能是膜蛋白: 1)一开始按照可溶性蛋白的常规步骤(匀浆,盐析)来处理,但发现目标蛋白的得率不高(无论是匀浆后的上清还是盐析后的沉淀中) 2)后面我在匀浆液中加入了1% tritonX-100,发现目标蛋白的得率得到了可观的表现 3)但加入了1% tritonX-100的匀浆上清(10000g×20min,除去未破细胞和细胞大碎片,上同),加入硫酸铵将其饱和度调至30%后,发现,目标蛋白不是沉淀在管底,而是聚集并漂浮在液面上。(这个原因还不清楚,师兄说是变性了。莫非这就是盐析沉淀膜蛋白不行的原因?) 不慎感激!!! [ Last edited by 任天青 on 2013-5-13 at 11:26 ] |
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ynkuaile
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【答案】应助回帖
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| 个人建议:1. 你加入1% 曲拉通,蛋白得率提高,其实并不能说明他是膜蛋白还是胞内蛋白。因为你提取步骤是匀浆……,并不能很好的使细胞膜破裂,加入表面活性剂,能进一步破坏细胞膜,所以能更多释放胞内蛋白,所以并不能说明是膜蛋白还是胞内蛋白。2. 膜蛋白没有去垢剂的溶解是提取不出来的,能提取的,那是膜相关蛋白或锚钉蛋白。3. 不用硫酸铵沉淀是因为膜蛋白不能沉淀,普通蛋白沉淀了之后可以再溶解,膜蛋白不能溶解了。因为膜蛋白在水中是不溶的,做膜蛋白要考虑如何增溶。4. 加入硫酸铵之后漂浮在液面上,个人觉得可能和曲拉通有关,高浓度的硫酸铵夺取水分子,使曲拉通聚集形成大的胶束。可能曲拉通包裹着你的蛋白或其他油脂,由于密度小,而漂浮在液面上。另外,加表面活性剂不用硫酸铵沉淀还有个原因。硫酸铵夺取蛋白表面与之结合的水分子,使蛋白内部疏水残基暴露,聚集沉淀下来,这时候要是有去垢剂的存在,去垢剂疏水部分会与蛋白质疏水残基相互作用,从而使蛋白质变性。但是由去垢剂作用的蛋白并不是大量聚集沉淀,而是由去垢剂将其分散,是分散的蛋白,并不会形成颗粒很大的沉淀,由于密度较硫酸铵溶液的小,所以漂浮在溶液上面。个人建议,仅供参考。 |
2楼2013-05-14 23:01:25
【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★
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wizardfan: 金币+5, 谢谢分析,以后常来 2013-05-16 07:22:55
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楼主!我关注这个话题很久了,看一直没有人给你回复,我就说点吧!其实我懂的也不多,只是大概知道点理论知识!希望能对你有用!! 首先,膜蛋白纯化在学术界一直是比较困扰的问题!一般的纯化方法并不能获得你要的膜蛋白,可能比较困难! 1. 由于膜蛋白的过表达可能对细胞有毒性, 2.在纯化时很难选择合适的溶解试剂,不同的去污剂,它的助溶效果都不一样!(与可溶性蛋白不同,膜蛋白具有单重或多重跨膜结构容易发生聚集,导致膜蛋白很难溶解。目前常用的方法就是去污剂进行膜蛋白的溶解。去污剂同时具有疏水和亲水区域,和膜蛋白可以形成膜蛋白-去污剂的复合物,从而可以进行进一步的纯化。) 先回答你的PS的问题,你开始的问题我会另起一楼! 我不建议你用硫酸铵的方法来获取膜蛋白,可能正如楼上所说! 1.建议你用水溶性的蛋白层析技术,他也是可以用于膜蛋白的纯化,例如IMAC的亲和层析,分子筛,离子交换! 2.每步纯化都需要添加去污剂,所以很消耗去污剂!成功的关键在于1).你去污剂种类的选择,不一定非选tritonX-100,其他的也试试!SDS,CHAPS and so on;2). 最佳pH的选择和盐浓度的选择,都会影响你膜蛋白纯化得到的纯度! 3.why我要添加去污剂?因为去污剂它存在CMC(临界胶束浓度)!如果不懂,可以上网search一下! 这一楼就这么多吧!多了可能你也不会看! |

3楼2013-05-15 10:54:52
【答案】应助回帖
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任天青(wizardfan代发): 金币+40, 谢谢参与 2013-05-22 07:35:12
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1. 采用超速离心的方法,也是分布离心的!根据每种物质不同的沉降系数来采用不同的离心率,从而达到分离的效果! 2. 为何后续的透析比较浪费非离子型去垢剂?因为透析的体积较大!所以你添加的非离子型去垢剂量就多!其实不一定非要选择非离子型去垢剂,非离子型去垢剂不一定是做好的选择,其他的种类去污剂也可试试! 好吧,就这么多吧!希望对你有用! |

4楼2013-05-15 11:12:11
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wizardfan: 金币+5, 感谢进一步的分析 2013-05-16 08:02:42
任天青(wizardfan代发): 金币+40, 谢谢参与 2013-05-22 07:34:51
wizardfan: 金币+5, 感谢进一步的分析 2013-05-16 08:02:42
任天青(wizardfan代发): 金币+40, 谢谢参与 2013-05-22 07:34:51
| 你80个金币太诱人了,不得不让我再回复一下你的帖子。你说常规可溶蛋白提取,得率不高,加曲拉通得率提高。可以肯定的说你的蛋白不是膜蛋白,因为膜蛋白如果没有去垢剂的提取是提取不出来的。你的蛋白可能是胞内蛋白或膜相关蛋白或锚钉蛋白。既然你的蛋白用曲拉通能提取出来,那么我觉得可以这么往下做:1. 透析掉曲拉通,硫酸铵沉淀。2. 你硫酸铵沉淀的目的是浓缩目的蛋白,其他方式也可以达到此目的,比如超滤,提取液比较多的话,有大的超滤装置。当然,还是透析掉曲拉通的好。因为你不加曲拉通的时候蛋白能提取出一些,只是量少,说明没有曲拉通蛋白还是可溶的,所以我觉得透析掉曲拉通不会影响蛋白的溶解性。你试验中的漂浮在液面上的现象可以这么解释:蛋白溶解在1%的曲拉通中,曲拉通的疏水端会与蛋白表面的疏水部分相互作用。这个浓度下的曲拉通不会使蛋白变性。加入高浓度硫酸铵,硫酸铵竞争结合水分子,使得曲拉通胶束浓度变大。曲拉通聚集。此时曲拉通的浓度比1%要高。高浓度的曲拉通会使得蛋白质变性。变性的蛋白并不会聚集沉淀,变性后的蛋白在曲拉通的作用下变为单分散或者多分散,但不会聚集成更大的聚集体以沉淀下来。曲拉通亲水的头部与硫酸铵溶液液面作用,曲拉通蛋白溶液密度小,浮在溶液表面。膜蛋白是不会用硫酸铵沉淀的。原因很多,硫酸铵沉淀一般都要求蛋白的量比较多,而膜蛋白能提取出一点都很费劲,所以不会用硫酸铵沉淀这种方法,膜蛋白的表达也很烧钱,所以会选择直接亲和纯化。膜蛋白想要得到沉淀只需要将去垢剂的浓度降低即可,不需额外加入其它东西。您的蛋白不是膜蛋白,是胞内蛋白或者膜相关蛋白。加曲拉通能提高你的得率很可能是你破细胞不完全,因为你用的方法是匀浆,超声等等,破的不完全。没有曲拉通也能提取你的蛋白,证明曲拉通对蛋白的稳定性影响不大,可以在你提取出来之后将其除去在做下面试验。除去曲拉通除了透析等方法外,还可以在正常盐浓度下过疏水柱,蛋白不结合,去垢剂由于疏水端会与柱子相结合。给点金币吧,打字不容易。 |
5楼2013-05-15 17:04:11







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