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[求助]
免疫组化酶标出现的问题求分析
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因为我用的是之前病理科没有做过的抗体SFRP1,所以尚在摸索条件阶段,几次预实验做下来,效果都不好,故求助,希望得到又经验的虫友们指导。 总的来说,要么非特异性染色(背景染色)很强,滴加DAB后几秒钟就出现棕黄色改变,弥漫性的。要么就全部阴性结果,或弱阳性,无法区分是否是实验操作的问题,还是抗原本身的有无。有时候又苏木素核染色很强,组织弥漫性蓝色深染。 求指导的几个要点是: 1,抗原修复液的配制。第一次因为背景染色强,第二次调整了抗原修复液的PH(用的tris-EDTA,由pH8.0降至pH6.5)。用的是微波修复,解冻档。2*5min。我用的是3mM Tris+ 0.4mM EDTA 然后用浓盐酸调pH. 2.TBS的配制。我用的是20gTris 溶解于1000ml蒸馏水,加浓盐酸调pH到7.5左右。浓度大概是0.165mol/L。 3.苏木素染色5-6min,然后凉水冲洗,然后1%盐酸酒精分化(2秒),然后热水冲洗反蓝。但是有的片子效果会是蓝色很深。有的片子核就染的很轻。求指导! 4,脱蜡时间是否越长越好?因为用的是公用的二甲苯,所以是在里面室温40-50分钟,怎样看是否脱蜡干净? 5,在开始和结束的时候都用到梯度酒精,是每个浓度的放置1分钟,还是蘸一下就拿出来? 6,关于洗TBS,是放置在其中浸泡3-5分钟,还是涮几下? 7,关于抗体稀释液,是用1%牛血清溶液稀释好,还是TBS稀释好?如果用1%小牛血清溶液稀释,是否还需要用5%牛血清封闭液封闭? 8,稀释后的DAB最多能够在4度冰箱里放置多久?过夜的是否可以使用? 因为用了放了2天的稀释后避光4度保存的DAB,全部是阴性结果,无法判断是DAB失效,还是抗原阴性。 9,因为不可能每调整一个步骤都做阳性阴性对照,因为阳性组织不好找,所以只能是通过调整试验步骤达到基本符合预期的效果。但是操作又实在是没有经验,所以不懂怎么分析和调整。 效果做出来实在是差别千万里,每个步骤更改过后得到的结果又总是不特别理想。因为是新手,每个环节都可能存在错误,贴在这里,希望得到有经验人士的指导。非常感谢! |
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