| 查看: 2819 | 回复: 4 | ||
| 本帖产生 1 个 博学EPI ,点击这里进行查看 | ||
[求助]
关于超滤离心管的使用问题
|
||
| 买了两个30KD的超滤离心管,这个一般装入多少mL物料液?用完后用什么溶剂洗涤?我在百度中没查到,也没有产品说明书,还请有经验的人赐教。先谢谢了。 |
» 猜你喜欢
溴的反应液脱色
已经有6人回复
国自然申请面上模板最新2026版出了吗?
已经有8人回复
纳米粒子粒径的测量
已经有7人回复
常年博士招收(双一流,工科)
已经有4人回复
推荐一本书
已经有10人回复
参与限项
已经有5人回复
有没有人能给点建议
已经有5人回复
假如你的研究生提出不合理要求
已经有12人回复
萌生出自己或许不适合搞科研的想法,现在跑or等等看?
已经有4人回复
Materials Today Chemistry审稿周期
已经有4人回复
» 本主题相关价值贴推荐,对您同样有帮助:
怎么解决超滤离心管对药物的吸附
已经有5人回复
新人求助:关于如何去除消化物中的小分子,透析袋or超滤离心管?
已经有9人回复
关于蛋白质浓缩的问题
已经有8人回复
求助:超滤离心管是一次性的吗?
已经有11人回复
超滤离心管与透析袋那个更好?
已经有14人回复
请教用超滤离心管除去DNA中的盐分。
已经有4人回复
有关Millipore超滤离心管的问题,急!
已经有14人回复
关于纳米制剂包封率的检测
已经有9人回复
求教:关于超滤离心管的使用问题
已经有4人回复
超滤离心管
已经有6人回复
【求助】超滤管的使用
已经有13人回复
【求助/交流】关于millpore超滤离心管
已经有8人回复
【求助/交流】蛋白质盐析及除盐
已经有14人回复
millipore超滤离心管
已经有7人回复
【求助】小弟,初次使用超滤离心管,有问题请教各位大侠,谢谢。。
已经有8人回复
【求助/交流】【求助】millipore超滤离心管想重复使用,请问如何清洗和保存?
已经有8人回复
【求助】关于超滤杯和超滤膜的问题
已经有15人回复
l_x_m莫惹
金虫 (著名写手)
- 博学EPI: 29
- 应助: 94 (初中生)
- 金币: 1202.7
- 散金: 180
- 红花: 2
- 帖子: 1549
- 在线: 191.2小时
- 虫号: 1945989
- 注册: 2012-08-19
- 性别: GG
- 专业: 天然有机化学
【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
liusir3836: 回帖置顶 2013-05-18 13:32:45
Runyu(liusir3836代发): 金币+10, 博学EPI+1, 楼主长时间未给予奖励!由版主代发金币10枚!感谢对本版的贡献! 2013-05-18 13:34:19
liusir3836: 回帖置顶 2013-05-18 13:32:45
Runyu(liusir3836代发): 金币+10, 博学EPI+1, 楼主长时间未给予奖励!由版主代发金币10枚!感谢对本版的贡献! 2013-05-18 13:34:19
|
Millipore厂家一共提供3KD、10KD、30KD、50KD、100KD五种超滤离心管,容量分别有0.5ml、4ml、15ml三种, 蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管,常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管(MWCO10kD)。也有其它型号 的、不同体积大小和MWCO超滤管可选,视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用,使用一次就扔掉太浪费。以下是个人总结的使用方 法和注意事项: 1、选择合适的超滤管,主要考虑MWCO和浓缩体积,最常见的是Ultra-15(10kD)。到底选择多大截留分子量比较合适呢?10kDa、 5kDa、还是30kDa?通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3,比如目的蛋白分子量为35kDa,就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右,则可以用截留分子量3kD的超滤管。认真阅读使用说明书,注意超滤膜对各种化学物质的耐受程度有所不同,表格中有。 2、新买来的超滤是干燥的,使用前加入MilliQ水,水量完全过膜,冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出,即可加入蛋白液,加入的多少,以不超过管顶的白线为准。操作要轻,加入蛋白液前,超滤管需要插在冰上预冷。 3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快,否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤(离心机预冷至4度)。不同离心机的转速 rpm换算成g之后,有所不同。具体可参阅附件里的说明书。离心机的加速度调至最低档,减小对膜的压力。注意,一定要等离心机达到目的转速之后,方可离开 离心机,否则离心机出问题时,无法第一时间处理,后果不可预测!膜与转轴的方向根据说明书调整(角转离心机的情况是膜与轴垂直)。在实际使用中,一般转速 开的比说明书里的要低,这样可以延长离心管的使用寿命。 4、当浓缩到剩下1ml时,【取50ul国产Bradford溶液,加入10ul流穿,看有没变蓝色,以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了,将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管,用5mgml的BSA离心10min,再取流穿,跑蛋白胶或Bradford粗测】,继续加入剩下的蛋白液浓缩(在冰上操作,防止蛋白受热),直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀,导致堵管。若发生沉淀,要确定沉淀的具体原因,是蛋白浓度过高还是Buffer不合适;前者可用多根超滤管同时超滤,降低浓度的办法解决,后者的方法是换不同的Buffer,直到蛋白不发生沉淀为 止。 5、前面几步用以浓缩蛋白,如果要换Buffer,在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候,轻轻加入新的Buffer(经0.22um超滤膜超滤),再 浓缩至1ml左右,连续三次,最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定,一般不多于500ul,也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍 左右的体积浓缩算,三次达到1000倍以上,基本上可以达到换buffer的目的。 6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作,用黄枪头(200ul)取,轻轻顺着边缘插入枪头,轻轻吹打、混匀蛋白液,注意不要碰到超滤膜,然后吸取 浓缩液,每次吸接近200ul,直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取,否则难度太大,有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中,没过 超滤膜,防止膜失水变干。 7、以下是处理超滤管,重复利用超滤管的步骤。 8、倒出超滤管里的水,用milliQ水轻轻润洗几次,【若管底有可见的蛋白沉淀,可以先加入水,然后用枪头吹打,注意不要碰到膜,吹打至沉淀悬起,然后倒掉,不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液,室温放置20min,期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液,将 管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时,不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗,内壁再用 MilliQ水洗干净。 9、取出浸没的管芯,加至接近满的MilliQ水,50ml管也加满MilliQ水,将管芯慢慢放入50ml离心管,排出部分水,然后盖上盖子,放4度保存,直到下次使用。一般来说,按照上述步骤和注意事项,每根管用三四年不会坏。 |
3楼2012-12-20 18:38:51
戴维奇奇
铜虫 (正式写手)
- 应助: 25 (小学生)
- 金币: 1263.2
- 红花: 3
- 帖子: 640
- 在线: 30.7小时
- 虫号: 2089048
- 注册: 2012-10-27
- 性别: MM
- 专业: 金属有机化学

2楼2012-12-20 13:51:34
mirongsheng
木虫 (著名写手)
- 应助: 3 (幼儿园)
- 金币: 10317.3
- 散金: 274
- 红花: 3
- 帖子: 2301
- 在线: 606.2小时
- 虫号: 1839794
- 注册: 2012-05-30
- 性别: GG
- 专业: 兽医寄生虫学

4楼2013-04-09 15:33:23
yingjie1985
金虫 (小有名气)
- 博学EPI: 2
- 应助: 0 (幼儿园)
- 金币: 837.2
- 帖子: 112
- 在线: 17.9小时
- 虫号: 2356775
- 注册: 2013-03-18
- 性别: MM
- 专业: 考古技术
【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★
Runyu(liusir3836代发): 金币+4, 楼主长时间未给予奖励!由版主代发金币4枚!感谢对本版的贡献! 2013-05-18 13:35:39
Runyu(liusir3836代发): 金币+4, 楼主长时间未给予奖励!由版主代发金币4枚!感谢对本版的贡献! 2013-05-18 13:35:39
| 找到两个资料不知,是不是你需要的,希望可以有用 |
» 本帖附件资源列表
-
欢迎监督和反馈:小木虫仅提供交流平台,不对该内容负责。
本内容由用户自主发布,如果其内容涉及到知识产权问题,其责任在于用户本人,如对版权有异议,请联系邮箱:xiaomuchong@tal.com - 附件 1 : 蛋白超滤膜的使用.doc
- 附件 2 : 超滤管使用方法和注意事项.doc
2013-04-10 16:53:55, 37 K
2013-04-10 16:54:08, 23.5 K

5楼2013-04-10 16:54:53












回复此楼