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请做过C2C12 细胞双向电泳的朋友帮帮我吧已有1人参与
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有没有哪个虫子做过C2C12 CELL 的双向电泳,因为自己所有的程序都是按照GE公司说明书上做的,包括配溶液、试剂,选择的是11cm的PH 3-10NL的胶条,但做了很长时间,始终做不出来,即使做出来点也极少,尤其是碱性端几乎没有点,请问是什么原因呢?如果有做出来的,希望您不吝赐教,咱们可以细聊! 好几天都没有回复,那我就把自己的实验细节发上来,另有图片,希望大家帮帮我,多谢啦! 一、样品制备:(C2C12贴壁细胞,100mm平皿) (1) 培养细胞的收集; (2) 用磷酸缓冲液(PBS)洗细胞3 次(室温,2000g, 2min);再用250mM的蔗糖洗3次,彻底吸干残留的蔗糖-山梨醇(5.48%), (3) 将细胞分装到1.5ml Eppendorf 管中 (4) 加入裂解缓冲液(8M尿素,4%CHAPS,10mM/mlPMSF,40mMDTT)300ul. (5) 冰浴超声约1min(超声2s,间隔8s) (6) 4°C,12,000g,离心1h,吸取上清,置于新的EP管中,于-80℃中保存。 二、Bradford法测蛋白浓度 取15个0.2ml的小离心管,其中12个做两个标准平行 0.1mg/mlBSA体积(ul) 10 8 6 4 2 0 水化液体积(ul) 0 2 4 6 8 10 BSA浓度(mg/ml) 0.1 0.08 0.06 0.04 0.02 0 再做3个重复,将样品用水化液稀释10倍(每一管1ul样品+9ul水化液),用微型离心机离心约1min,再吸取至96孔的细胞培养板中,每个孔再加入200ul的CBB,约5min,用酶标仪在595nm测吸光度。测出的蛋白质浓度约为4mg/ml. 三、水化上样 1、从冰箱中取-20冷冻保存的水化上样缓冲液((8M尿素,2%CHAPS)一小管(500ul),置室温溶解。 2、在小管中加入DTT(约为2.8mg/ml),颠倒混匀。 3、从冰箱中取-20℃冷冻保存的IPG预制胶条(11cm pH3-10NL),于室温放置10分钟。 4、取出-80℃中的蛋白样品(4℃离心12,000g,5min),上样600ug,根据所测浓度量取体积,并加入相应体积的水化液(总体积为240ul),被动水化14h 四、一向(仪器为Ettan IPGphor3) 程序为S1 100V stp 1h; S2 200V stp 1h; S3 500V stp 1h; S4 1000V stp 1h; S5 6000V Grd 2h ; S6 6000V 35000vhr Grd S7 500V stp 15h 五、二向(电泳仪为GE的SE600 Ruby) 1、平衡,按75 mMTris-HCl pH 8.8, 6 M urea, 2% SDS, 29.3% glycerol(v/v) and 1% DTT 平衡 15min, 再用上述缓冲液(不加DTT)加入2.5%IAA 平衡15min. 2、12%SDS-PAGE,10mA/一块胶持续15min,15mA/一块胶跑到底。 但做过很多遍,跑出来的点都很少,尤其是在碱性端,几乎没有点,可见图片( PH 3-10,图片左侧为碱性端)[ Last edited by buzaimihuo on 2012-12-2 at 20:29 ] |
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2012-12-02 20:27:41, 10.24 M
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2楼2015-02-02 11:18:15












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