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与多糖相关的前辈们帮帮忙啊
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| 本人做多糖提取的相关实验,现在已经提到了粗多糖,接下来该怎么办呢?老师说让先在薄层板上跑板,他说的什么意思啊? |
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【答案】应助回帖
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感谢参与,应助指数 +1
2320: 金币+2, ★★★很有帮助, 谢谢您的帮助! 2012-11-06 10:17:53
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你只做了提取得到了一个混合物接下来要纯化 1、脱蛋白和色素。 2、色谱柱纯化 3、分子量测定 4、结构确定 一、提取 样品处理:洗净,晾干、磨碎、过筛( 80 目) 1、热水提法 料液比=1∶(20-30)有报道1:30最好,90℃时浸提2h,反复浸提2次,5000r/min离心15min,残渣水洗后重复离心一次,合并上清液,经减压浓缩(60℃)。 2、稀酸提法 在60-70℃用料液比1∶20、pH 2。0.17mol/L-HCl(pH=2) 的稀盐酸提取两次,每次2h,离心,合并上清液用碱(NaOH)中和。 以上两个方法可以辅助超声波。辅助条件:物料比为1:30,提取时间为30min,温度为60-70℃,pH为7.超声波频率以低频好,高频率会使多糖分子断裂。 二、脱蛋白分离多糖 根据蛋白质在氯仿等有机溶剂中变性的特点,用V(氯仿)∶V(戊醇或正丁醇)为5∶1或4∶1(滤液:氯仿:正丁醇=25:(4、5):1),混合物剧烈振摇20~30min,蛋白质变性生成凝胶,离心分离,分去水层和溶剂层交界处的变性蛋白质.此种只能除去少量蛋白质,效率不高,须反复多次,多糖有损失.但此方法比较温和,在避免多糖降解上效果较好,如配合加入一些蛋白质水解酶,用Sevage法效果更佳。Sevage 法和酶法联用除蛋白即先添加0.1%的木瓜蛋白酶,在pH 6.5、50℃条件下酶解2h,再用Sevage 法反复脱蛋白6 次,直到中间层无沉淀产生为止,收集上层液,透析( 透析袋截留相对分子质量3000u) 截留液减压浓缩,加乙醇(3倍体积95%乙醇)至浓度为70%,静置沉淀。生成沉淀经丙酮、乙醚、无水乙醇依次洗涤(可除去色素),真空冷冻干燥得粗多糖。 注:除褐藻酸:取上述粗多糖溶解于蒸馏水中,加入终浓度为0.05mol /L 的CaCl2和20% 的乙醇,室温放置过夜使沉淀完全, 3000r /min 离心20min,弃去粗多糖中的褐藻酸钙沉淀。 三、纯化 1、纤维素阴离子交换柱层析DEAE‐cellulose 最常见的交换剂为DEAE-纤维素(硼酸型或碱型),洗脱剂可用不同浓度的碱溶液、硼砂溶液、盐溶液等。此方法目前最为常用。它一方面可纯化多糖,另一方面还适于分离各种酸性多糖、中性多糖和粘多糖。 多糖溶液加入DEAE-52层析柱上端,分别用浓度为0、0.1、0.2、0.4、0.8、1.0mol /L NaCl 溶液进行梯度洗脱,流速为1.0mL /min,以6mL /管进行样品收集。苯酚-硫酸法在480nm 处跟踪检测吸光度,绘制洗脱曲线,透析、浓缩、冷冻干燥,可以得到不同分子量的多糖。 2、凝胶柱层析 根据多糖分子的大小和形状不同进行分离。常用的凝胶有葡聚糖凝胶(Sephadex)及琼脂糖凝胶(Sepharose)。多糖分离时多选用Sephadex G—50以分离相对分子量在1万以下的各组分,然后选用Sephadex G-150-200进一步纯化。展层剂为各种浓度的盐溶液及缓冲液,一般用0.1mol/L NaCl。 (20×430mm),用苯酚—硫酸法进行检测,收集糖反应阳性高峰部分,醇沉,干燥,即得纯化的多糖。 要注意的是,对多糖的纯化,其纯度是相对的,不可能象某些成分那么单纯。这里的纯化仅是得到相对分子量在某一范围里较为均一的多糖。 对于分子量较大的多糖,选择的sephadexG类对应的凝胶型号一般为sephadex G‐100、sephadex G‐150、sephadex G‐200,这些都属于比较软的一些凝胶(其中sephadex G‐200由于太软已经停止生产),这时,可以考虑用CellufineGCL‐2000代替,此填料的基材为纤维素,机械强度好,且它的分子量范围较宽,比较适合多糖的分离。 实验流程: 浓缩液--离心--醇析--DEAE‐52 纤维素--Sephadex G‐200 凝胶层析--多糖含量的测定--多糖组分纯度检测 |
3楼2012-11-06 00:31:13













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