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关于Transwell迁移实验的一些问题
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最近在做Transwell迁移实验,但一直不是很成功,下面有几个问题想跟大家探讨一下,还请各位虫友不吝赐教。 1、上层小室加的细胞悬液为什么要含0.5%的BSA,BSA的作用是什么。 2、下层我用的是含5%FBS的培养基,曾经用过0.4%FBS的培养基,细胞没迁移过去,下层小室FBS是不是含量越低越好。 3、还有就是transwell小室实验前需不需要怎么处理一下,比如用无血清培养基浸润半个小时什么的。 4、加完细胞悬液后一般多长时间染色观察,我看文献有说5h,但是我觉得5h根本都迁移不过去。 |
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boylover123(金币+1): 谢谢参与
wizardfan: 金币+3, 应助指数+1, 很详细的回答 2012-09-30 08:04:58
boylover123: 金币+4, 谢谢你的回答,很详细,很受用 2013-01-11 20:39:25
boylover123(金币+1): 谢谢参与
wizardfan: 金币+3, 应助指数+1, 很详细的回答 2012-09-30 08:04:58
boylover123: 金币+4, 谢谢你的回答,很详细,很受用 2013-01-11 20:39:25
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迁移和侵袭我都做过,我来答吧: 1、上层小室加的细胞悬液为什么要含0.5%的BSA,BSA的作用是什么。 答:是为了保持渗透压,不至于让上室的水分渗透到下室太多,影响了药物浓度(如果加药的话)和实验结果。也可以用1%的FBS。 2、下层我用的是含5%FBS的培养基,曾经用过0.4%FBS的培养基,细胞没迁移过去,下层小室FBS是不是含量越低越好。 不是,上室FBS含量要低于下室,FBS里除含有养分外,也含有趋化因子,FBS浓度差是细胞迁移的诱导动力。如无特殊要求,下室浓度可用细胞培养液中FBS的浓度,即10%。 3、还有就是transwell小室实验前需不需要怎么处理一下,比如用无血清培养基浸润半个小时什么的。 如果是迁移的话不用;如果是侵袭实验的话,因为transwell小室上铺有Matrigel,所以要无血清培养基侵润一到两个小时,叫做“水化基底膜” 4、加完细胞悬液后一般多长时间染色观察,我看文献有说5h,但是我觉得5h根本都迁移不过去。 这个要看细胞的迁移能力了。如果用的是正常细胞,如表皮细胞、成纤维细胞、内皮细胞等,其迁移能力较弱,需要24小时甚至更长的时间;如果是肿瘤细胞,则较快;如果是高度恶性肿瘤细胞(就是高转移肿瘤,比如人的卵巢癌、膀胱癌等),迁移能力很强,5、6个小时就能迁移过去。并且,这个跟所种的细胞数也相关,需要摸一下条件。宗旨就是:在迁移时间内,阴性对照组(不加药的情况下)只有部分细胞迁移到下室,而不是全部。我的意思是,如果时间过长,全部细胞慢慢挪,是可以都挪到下室的,这样可能导致阴性组和加药组看不出应有的差别来。当然过短也不行,只有极少的细胞迁移了,结果还是不明显,所以需要摸一下条件。 另外嘱咐几点: 一是,实验结束染色后,别忘了单独观察一下下室中是否有掉落的细胞,有时实验细胞数较多或实验时间较长(比如超过24小时),细胞在小室的底部粘不牢,掉到下室去,未能被染色,影响统计结果。若有,则下次实验可在上室底部包被FN(纤维粘连蛋白),增强粘附。尤其是用正常细胞的时候。 二是,实验结束后,尽快染色,勿让细胞风干,否则细胞会有破裂的现象,染完色后在显微镜下不好看,烂乎乎的。在这里提示一个小tip:如果用结晶紫染色,感觉细胞很多怕计数不准的话,可以用醋酸将结晶紫洗下,上酶标仪读OD(我一时忘了波长了,这个可以查一下),用以辅助验证结果。这里醋酸洗掉的只是结晶紫,细胞还在,还可以再次用结晶紫复染,显微镜下看,效果与初染几无差别 |
14楼2012-09-29 23:36:07
2楼2012-09-29 11:52:51
3楼2012-09-29 16:37:45
6楼2012-09-29 17:47:01













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