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1 细胞培养及分组 MCM4201完全培养基常规培养HMCs,置于37℃、饱和湿度5%CO2的孵箱内贴壁传代培养,隔日换液,0.25%胰酶3~4天消化、传代。取6~9代对数生长期细胞,以每孔3~5×105个细胞接种6孔板中,培养细胞待其贴壁融合70%~80%后用无血清Opti-MEM培养基同步化24h,用于RNA转染及不同环境下继续培养。 2、siRNA合成与转染 根据GenBank数据库提供的人SAA全长基因(GenBank Acc. No. NM_001664.2)由美国Invitrogen公司设计合成RNAi的siRNA,SAA-siRNA:5′-GCUCAGACAAAUACUUCCAUGCUCG-3′;HMCs共分7组:(1)正常对照组(NG,含葡萄糖5.5mmol/L);(2)高糖组(HG,含葡萄糖30mmol/L);(3)等渗对照组(Man+ NG,含5.5mM葡萄糖及24.5mM的甘露醇);(4) 波动糖组(FG, 含葡萄糖30mmol/L与含葡萄糖5.5mmol/L MCM培养基每4小时交替培养);(5)高糖+脂质体对照组(HG+Lipo);(6)高糖+阴性转染对照组(HG+negative-siRNA);(7) 高糖+SAA-siRNA组(HG+SAA-siRNA)。以绿色荧光蛋白(Green fluorescent protein, GFP)标记的siRNA做对照,转染48h后在荧光倒置显微镜下观察GFP的表达,计算转染效率。脂质体瞬时转染方法严格按照Lipofectamine?2000说明书进行。于0h、12h、24h、48h末收集各组细胞上清。 3 、总RNA提取及cDNA的合成 各组分别作用48h后按5×106~1×107个细胞加1ml TRIzol低温吹打,后续操作按Trizol说明书进行,最后用DEPC处理的超纯水溶解RNA,60℃孵育5 min,1%琼脂糖凝胶电泳检测其完整性,分光光度计测定其纯度和浓度。cDNA合成的反应体系按照试剂盒进行:① 5×PrimeScriptTM Buffer(for Real Time) 4 μl; ② PrimeScriptTM RT Enzyme Mix I 1μl;③ Oligo dT Primer(50 μM)1μl;④Random 6 mers(100 μM)1μl;⑤ Total RNA 1μg;⑥ 加RNase Free dH2O至20μl反应体系。反转录反应条件:37℃,15min;85℃,15s反转录成cDNA。 4 、实时定量PCR 采用SYBRGreen嵌合荧光进行反应,按说明书配制25μl的反应体系,①SYBR? Premix Ex TaqTM II(2×)12.5 μl;②PCR Forward Primer(10 μM)1μl;③PCR Reverse Primer(10 μM)1μl; ④模板(cDNA溶液)2μl;⑤dH2O 8.5 μl。阴性对照组加入未反转录的RNA作为模板。上下游引物均由大连宝生物工程有限公司(Takara)设计合成(表1),反应条件如下:95℃预变性30s,95℃变性5s,58~62℃退火20s,72℃延伸30s同时获取荧光,共40个循环,后行产物的溶解曲线分析, 得到样品量的参数Ct值(循环阈值)。以2-ΔΔCt 表示基因的相对表达量,ΔΔCt=[Ct(待测基因)-Ct(GAPDH)]试验组-[Ct(待测基因)-Ct(GAPDH)]对照组。 5 、ELISA法检测细胞上清液中FN、SAA、TNF蛋白的含量 取不同处理因素作用0h、12h、24h、48h的细胞上清液,无菌管收集,6000转,4℃,离心10分钟,仔细收集上清,后续操作按ELISA试剂盒说明书进行,在酶标仪450nm波长处,以空白对照孔调零,直接测定吸光值,并由标准曲线公式换算成各蛋白的浓度值。 6、 数据分析 所有数据以 表示,采用SPSS 17.0统计分析软件,组间比较采用单因素方差分析,组内两两比较采用LSD, Dunnett’s T3,P<0.05为差异有统计学意义。 [ Last edited by Mally89 on 2011-4-5 at 15:04 ] |
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2楼2011-03-30 10:37:17
!已经为中文了,故如下:1 细胞培养及分组 MCM4201完全培养基常规培养HMCs,置于37℃、饱和湿度5%CO2的孵箱内贴壁传代培养,隔日换液,0.25%胰酶3~4天消化、传代。取6~9代对数生长期细胞,以每孔3~5×105个细胞接种6孔板中,培养细胞待其贴壁融合70%~80%后用无血清Opti-MEM培养基同步化24h,用于RNA转染及不同环境下继续培养。 2、siRNA合成与转染 根据GenBank数据库提供的人SAA全长基因(GenBank Acc. No. NM_001664.2)由美国Invitrogen公司设计合成RNAi的siRNA,SAA-siRNA:5′-GCUCAGACAAAUACUUCCAUGCUCG-3′;HMCs共分7组:(1)正常对照组(NG,含葡萄糖5.5mmol/L);(2)高糖组(HG,含葡萄糖30mmol/L);(3)等渗对照组(Man+ NG,含5.5mM葡萄糖及24.5mM的甘露醇);(4) 波动糖组(FG, 含葡萄糖30mmol/L与含葡萄糖5.5mmol/L MCM培养基每4小时交替培养);(5)高糖+脂质体对照组(HG+Lipo);(6)高糖+阴性转染对照组(HG+negative-siRNA);(7) 高糖+SAA-siRNA组(HG+SAA-siRNA)。以绿色荧光蛋白(Green fluorescent protein, GFP)标记的siRNA做对照,转染48h后在荧光倒置显微镜下观察GFP的表达,计算转染效率。脂质体瞬时转染方法严格按照Lipofectamine?2000说明书进行。于0h、12h、24h、48h末收集各组细胞上清。 3 、总RNA提取及cDNA的合成 各组分别作用48h后按5×106~1×107个细胞加1ml TRIzol低温吹打,后续操作按Trizol说明书进行,最后用DEPC处理的超纯水溶解RNA,60℃孵育5 min,1%琼脂糖凝胶电泳检测其完整性,分光光度计测定其纯度和浓度。cDNA合成的反应体系按照试剂盒进行:① 5×PrimeScriptTM Buffer(for Real Time) 4 μl; ② PrimeScriptTM RT Enzyme Mix I 1μl;③ Oligo dT Primer(50 μM)1μl;④Random 6 mers(100 μM)1μl;⑤ Total RNA 1μg;⑥ 加RNase Free dH2O至20μl反应体系。反转录反应条件:37℃,15min;85℃,15s反转录成cDNA。 4 、实时定量PCR 采用SYBRGreen嵌合荧光进行反应,按说明书配制25μl的反应体系,①SYBR? Premix Ex TaqTM II(2×)12.5 μl;②PCR Forward Primer(10 μM)1μl;③PCR Reverse Primer(10 μM)1μl; ④模板(cDNA溶液)2μl;⑤dH2O 8.5 μl。阴性对照组加入未反转录的RNA作为模板。上下游引物均由大连宝生物工程有限公司(Takara)设计合成(表1),反应条件如下:95℃预变性30s,95℃变性5s,58~62℃退火20s,72℃延伸30s同时获取荧光,共40个循环,后行产物的溶解曲线分析, 得到样品量的参数Ct值(循环阈值)。以2-ΔΔCt 表示基因的相对表达量,ΔΔCt=[Ct(待测基因)-Ct(GAPDH)]试验组-[Ct(待测基因)-Ct(GAPDH)]对照组。 5 、ELISA法检测细胞上清液中FN、SAA、TNF蛋白的含量 取不同处理因素作用0h、12h、24h、48h的细胞上清液,无菌管收集,6000转,4℃,离心10分钟,仔细收集上清,后续操作按ELISA试剂盒说明书进行,在酶标仪450nm波长处,以空白对照孔调零,直接测定吸光值,并由标准曲线公式换算成各蛋白的浓度值。 6、 数据分析 所有数据以 表示,采用SPSS 17.0统计分析软件,组间比较采用单因素方差分析,组内两两比较采用LSD, Dunnett’s T3,P<0.05为差异有统计学意义。 Keywords: 细胞培养 SiRNA PCR |
3楼2011-03-30 10:38:55
4楼2011-03-30 10:49:37
5楼2011-03-30 10:51:12
6楼2011-03-30 10:55:24
supergreen(金币+150, 翻译EPI+1): 大神 好感谢。。 2011-04-05 20:18:18
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大致翻译了一下,不知符合楼主要求不 https://d.namipan.com/d/0352a2c8 ... d30535230bf00960000 |
7楼2011-04-05 01:18:19













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!已经为中文了,故如下:
哪位大侠知道主题要怎么改呀??? 是中文翻译成英文呀 神呐~~~~~~~~