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举2个例子先: 1、冬天的时候,配制SDS-PAGE胶的时候,凝的会比较慢,可以放到恒温培养箱中,这样基本5-10分钟就会完全凝,不会影响SDS-PAGE的效果跟电泳图的美观; 2、配制SDS-PAGE胶的时候,经常会有漏胶的问题,在垂直板的下面抹一点凡士林或者加一条石蜡封口膜就好了 [ Last edited by rainwander on 2011-1-15 at 20:37 ] |
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分子生化实验经验积累 |
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rainwander![]() 1、冬天的时候,配制SDS-PAGE胶的时候,凝的会比较慢,可以放到恒温培养箱中,这样基本5-10分钟就会完全凝,不会影响SDS-PAGE的效果跟电泳图的美观; 2、配制SDS-PAGE胶的时候,经常会有漏胶的问题,在垂直板的下面抹一点凡士林或者加一条石蜡封口膜就好了。 天使托![]() 1:倒板子的时候,剧烈晃动之后如何减少气泡的产生呢?原来我要着急倒板子,就将熔化的培养基用水冲,倒是凉的快,可是会产生很多气泡,遇到这种情况呢,可以将瓶子慢慢的转,这样,气泡就会慢慢消失,即便消失不了,也会靠壁,这样倒的板子就不会有气泡了! 2:手提质粒的时候,最后加入RNA水的时候,不要着急去点样,因为手提的质粒不纯,而且RNA比较多,如果着急点样的话,跑出来的带RNA会很多,可以加入RNA水后放上一会,使RNA被RNA酶慢慢分解后再去点样,这样跑出来的带相对来说比较好一点! dream-fish 1、抽质粒最后加的水最好加热到60°,离心下来的水再次加到离心柱中,再洗脱一次。这样的质粒会非常亮。 2、涂板的时候,如果样品很多,要烧很多涂抹棒,那样很费时间,可以用灭菌过的玻璃珠,一次加5到6颗,晃一晃就好,非常方便。一次可以灭很多玻璃珠的。 susizheng 牙签的妙用。 1、用牙签挑菌,速度快、好、省这些大家肯定知道,就不多说了。 2、提质粒的时候,加入溶液I后要悬浮,大家通常的做法是用枪吸打,但是由于溶液I中有SDS,这样会导致产生泡沫,菌体量大的话,有时候全部吸打成泡沫了,而且,当你提8-10份质粒的时候,全部吸打完毕,手都要抽筋了。我的做法是,用牙签先将菌体挑松,然后将牙签放在EP管中,将EP管放至漩涡震荡仪上,这样伴随着漩涡震荡仪的震荡,牙签会在EP管中飞速搅拌,这样混匀,只需要3-4S,而且效果比枪吸打要好。 3、制蛋白样的时候,收集菌体,加入蛋白上样缓冲液后,将菌体重悬,由于蛋白上样缓冲液中也有SDS,而且蛋白缓冲液量较少(一般1mL菌液收集菌体后,我用100uL蛋白上样缓冲液),这时候,用枪吸打很容易产生泡沫,不利于后面的煮样,但是同样用上面的方法的话,效果会很好。 funny8125 1、提DNA的时候,需要用氯仿抽提,离心后取上清的时候,可以用剪刀把枪头的前面剪掉,这样吸取上清的时候,能尽量避免洗到下层的氯仿。 2、做PCR的时候,可以等PCR仪温度升到72度以上的时候,再把样品放入,这样可以减少引物二聚体。 real339![]() 1、农杆菌质粒拷贝数低,不易用酶切鉴定,可提质粒转化大肠杆菌,再提大肠杆菌质粒进行酶切鉴定。 [ Last edited by rainwander on 2011-1-18 at 11:21 ] |
2楼2011-01-15 20:35:39
3楼2011-01-15 20:35:44
4楼2011-01-15 20:36:02
5楼2011-01-15 21:49:33
天使托
专家顾问 (职业作家)
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专家经验: +57 - BioEPI: 17
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rainwander(金币+2):很好,谢谢分享~~~ 2011-01-16 09:54:09
rainwander(金币+2):你是第一个,额外赠送~~ 2011-01-16 09:54:40
rainwander(金币+2):你是第一个,额外赠送~~ 2011-01-16 09:54:40
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我也来一个: 1:倒板子的时候,剧烈晃动之后如何减少气泡的产生呢?原来我要着急倒板子,就将熔化的培养基用水冲,倒是凉的快,可是会产生很多气泡,遇到这种情况呢,可以将瓶子慢慢的转,这样,气泡就会慢慢消失,即便消失不了,也会靠壁,这样倒的板子就不会有气泡了! 2:手提质粒的时候,最后加入RNA水的时候,不要着急去点样,因为手提的质粒不纯,而且RNA比较多,如果着急点样的话,跑出来的带RNA会很多,可以加入RNA水后放上一会,使RNA被RNA酶慢慢分解后再去点样,这样跑出来的带相对来说比较好一点! |
6楼2011-01-16 09:35:45
7楼2011-01-16 11:17:46
8楼2011-01-16 12:49:59
rainwander(金币+2): 恩,很好,很好~~谢谢分享分享~~~ 2011-01-16 20:56:42
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牙签的妙用。 1,用牙签挑菌,速度快、好、省这些大家肯定知道,就不多说了。 2,提质粒的时候,加入溶液I后要悬浮,大家通常的做法是用枪吸打,但是由于溶液I中有SDS,这样会导致产生泡沫,菌体量大的话,有时候全部吸打成泡沫了,而且,当你提8-10份质粒的时候,全部吸打完毕,手都要抽筋了。我的做法是,用牙签先将菌体挑松,然后将牙签放在EP管中,将EP管放至漩涡震荡仪上,这样伴随着漩涡震荡仪的震荡,牙签会在EP管中飞速搅拌,这样混匀,只需要3-4S,而且效果比枪吸打要好。 3,制蛋白样的时候,收集菌体,加入蛋白上样缓冲液后,将菌体重悬,由于蛋白上样缓冲液中也有SDS,而且蛋白缓冲液量较少(一般1mL菌液收集菌体后,我用100uL蛋白上样缓冲液),这时候,用枪吸打很容易产生泡沫,不利于后面的煮样,但是同样用上面的方法的话,效果会很好。 [ Last edited by susizheng on 2011-1-16 at 20:38 ] |
9楼2011-01-16 20:37:00
10楼2011-01-17 10:12:29
rainwander: 你可以分享一下你的小技巧啊 2011-01-28 14:13:05
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我也来一个: 1:倒板子的时候,剧烈晃动之后如何减少气泡的产生呢?原来我要着急倒板子,就将熔化的培养基用水冲,倒是凉的快,可是会产生很多气泡,遇到这种情况呢,可以将瓶子慢慢的转,这样,气泡就会慢慢消失,即便消失不了,也会靠壁,这样倒的板子就不会有气泡了! 2:手提质粒的时候,最后加入RNA水的时候,不要着急去点样,因为手提的质粒不纯,而且RNA比较多,如果着急点样的话,跑出来的带RNA会很多,可以加入RNA水后放上一会,使RNA被RNA酶慢慢分解后再去点样,这样跑出来的带相对来说比较好一点! 本文来自: 小木虫论坛 http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=2803390 |
11楼2011-01-17 16:51:56
12楼2011-01-17 17:04:53
14楼2011-01-18 10:56:53
15楼2011-01-24 08:52:43
16楼2013-05-22 06:03:45
17楼2014-04-25 09:12:24
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yusuya13楼
2011-01-17 19:38
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