24小时热门版块排行榜    

查看: 2458  |  回复: 29

chemifunan

木虫 (正式写手)

海王小木虫


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
XbaI 有的时候有甲基化修饰 是总会切不开 可以用两个方法 一个是在旁边换一个酶切位点或者再就是把原来的质粒转化到S17-1等这样的去甲基化大肠里,再提出来后再切。
Bemühen Sie !
21楼2010-08-14 07:26:50
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

gaowei706

铁杆木虫 (职业作家)

资深潜水者


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
你的片段是多大?片段中间有没有你用的酶的切点?
逐渐失去棱角
22楼2010-08-14 07:33:51
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

足下客

木虫 (正式写手)

★ ★ ★
小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
看天(金币+2):鼓励 2010-08-26 21:31:34
这个结果不对啊。请问楼主你第一张图提的质粒是同一种吗?我看着大小差别蛮大的,你是不是同时构建了好几个质粒呢?再就是不可能单酶切出来两条带,双酶切反而是一条带的。还有你做PCR验证了没有?如果PCR验证结果正确的话,最好是测一下序
23楼2010-08-14 08:46:03
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

linxi8579

铜虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
引用回帖:
Originally posted by hubuzdw at 2010-07-26 22:16:54:

图很奇怪,EcoR-I 有星活性,用HindIII好切,明显你的EcoR-I 酶切不完全,没的比,另外你DNA模板回收干净了?为什么不每次上个PMD18T和模板质粒的对照,相同条件处理的?

单纯的大小比较似 ...

请问你说的星活性是什么意思啊,所以切出了两条带吗?
24楼2010-08-14 11:32:16
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

linxi8579

铜虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
引用回帖:
Originally posted by hubuzdw at 2010-07-27 12:08:39:

你的DNA模板是质粒还是基因组DNA?如果是基因组DNA的话,把PCR产物用特异性酶切一下,看看PCR产物是否是目标条带。如果是质粒来源的话,就把PCR产物单独转一个(就是不加T载体的)做对照,看能不能转化出菌落来, ...

弱问一下,重组子具体是个什么概念啊?谢谢哈。
25楼2010-08-14 15:24:51
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

hubuzdw

金虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
引用回帖:
Originally posted by linxi8579 at 2010-08-14 15:24:51:

弱问一下,重组子具体是个什么概念啊?谢谢哈。

重组子就是含有目标片断的质粒。
清风吟月,秋水伊人
26楼2010-08-14 20:08:36
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

hubuzdw

金虫 (正式写手)

★ ★
小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
看天(金币+1):鼓励 2010-08-26 21:32:03
引用回帖:
Originally posted by linxi8579 at 2010-08-14 11:32:16:

请问你说的星活性是什么意思啊,所以切出了两条带吗?

星活性就是非特异性切割,主要是有些酶在高离子强度高甘油浓度或高酶量产生的。
清风吟月,秋水伊人
27楼2010-08-14 20:11:55
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

小虫子666

铁杆木虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
质粒电泳很亮,怎么酶切带很模糊呢?质粒你多少跑的电泳?酶切体系多大的?做个大体系看看会不会有你的目的条带?带上对照要不没有可比性。
28楼2010-08-15 18:17:57
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

怎么都行

银虫 (小有名气)

★ ★ ★
小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
看天(金币+2):鼓励交流 2010-08-26 21:32:41
EcoRI这种内切酶的Buffer比较特别,NEB的EcoRI和HindIII是不能同时双酶切的,Takara这两种酶双酶切需要1.5×M buffer,但酶切效率不高,应该延长酶切时间。
    不知道楼主用的Marker是什么,目的片段如果是1800bp的话,那切出来的产物比这个数目多57bp(依据pMD18-T载体图谱),电泳时应该还是在1800bp左右的位置,通过电泳图对比Marker能够分辩出来的。
    楼主用的电泳仪连接稳压器了么?从图上看似乎有电压不稳的迹象:同样的产物带在不同点样孔里迁移率有高有低。
29楼2010-08-15 19:35:53
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

海阔天空8158

木虫 (著名写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖
首先,要说明一下用的电泳marker是哪种,便于判断条带大小。
另外,为什么不在同一张电泳图上将marker,单酶切,双酶切、空质粒(包括未酶切、单酶切、双酶切)跑一下呢??这样楼主就清楚了。

祝实验顺利。
天行健,君子以自强不息;地势坤,君子以厚德载物。
30楼2012-01-15 14:43:03
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖
相关版块跳转 我要订阅楼主 ltakashi 的主题更新
普通表情 高级回复 (可上传附件)
信息提示
请填处理意见