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zhuifeng7000

至尊木虫 (著名写手)

[交流] 【求助/交流】原核生物膜蛋白的提取 已有2人参与

求助:想提取原核生物的膜蛋白(最好是革兰氏阳性、厌氧的微生物),想问一下提取的原理、注意事项及提取的protocol,谢谢大家!
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linglan2612

金虫 (正式写手)

zhuifeng7000(金币+5):谢谢! 2010-05-12 23:19:34
提一点不成熟的意见:
楼主如果要提G+菌的膜蛋白,我认为首先要把细菌进行破壁,因为我们已知G+菌有很厚的细胞壁层(多糖类和蛋白质),这层细胞壁中的蛋白又分为锚定在细胞壁的蛋白以及分泌到胞外后又由于某些原因重新以某种方式(一般是非共价结合)而固定到细胞壁上的蛋白。楼主如果只是单纯的需要膜蛋白的话,需要先对细菌进行破壁,去除掉细胞壁蛋白,然后再按照zhjp326的方法来获取膜蛋白,可能这样的结果更严谨。
呵呵。
任务分解,做好计划,减少情绪对抗
3楼2010-05-12 09:25:45
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zhjp326

铁杆木虫 (正式写手)

★ ★ ★ ★ ★
amisking(金币+5):good! 2010-05-12 08:14:24
zhuifeng7000(金币+10):谢谢! 2010-05-12 23:20:05
从新鲜样品中提取疏水性膜蛋白(Triton X-114去污剂法)

1、配制疏水性蛋白提取液(非裂解液):1% Triton X-114,150mM NaCl, 10mM Tris-HCl,1mM EDTA,调pH值至8.0备用。

2、菌液于4℃条件下15000g离心15min收集菌体;用1ml 含有5mM MgCl2 的PBS洗涤3次,最后于4℃条件下15000g离心15min收集菌体。

3、菌体沉淀加入1ml冷提取液,于4℃条件下放置2h,17000g离心10min,去除沉淀取上清。

4、将上述上清中的Triton X-114含量增加到2%,再加入20mM的CaCl2抑制部分蛋白酶活性,37℃条件下放置10min使其分层。室温下1000g离心10min使液相和去污相充分分层。

5、将液相和去污相分开,分别用10倍体积的冷丙酮在冰上沉淀45min。

6、于4℃条件下17000g离心30min,用去离子水洗涤沉淀3次。

7、将沉淀溶解在1% SDS溶液中,测定蛋白浓度,比较液相和去污相中蛋白提取效率,一般是去污相中疏水性膜蛋白较多,适于进一步蛋白实验。

8、SDS-PAGE进一步分析液相和去污相的蛋白图谱。
2楼2010-05-12 07:58:24
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