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活性氧(ROS)含量检测试剂盒实验解决方案已有1人参与
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实验步骤 对于刺激时间较短(通常为2 h以内)的细胞,建议先装载探针,后用活性氧阳性对照或感兴趣的药物刺激细胞;对于需要较长时间刺激(通常为6 h以上)的细胞,建议先用活性氧阳性对照或感兴趣的药物刺激细胞,后装载探针,此处仅提供后者的实验方法,具体步骤如下: 1.原位装载探针 (仅适用于贴壁细胞) a) 细胞准备:检测前一天细胞铺板,确保检测时细胞数量小于5×105个/mL。 b) 药物诱导:去除细胞培养液,加入无血清培养基稀释的药物处理细胞,于37℃细胞培养箱内避光孵育,实际诱导时间根据药物特性和细胞类型决定。 c) (选做)阳性对照:用无血清培养液稀释Positive Control (50 mM) 到常用工作浓度50 μM,加入细胞,37℃避光孵育30 min-4 h。为提高活性氧水平,不同类型细胞刺激时间存在差异,例如:HeLa细胞需处理30-60 min。 注意:(1)仅在阳性对照孔中加入,其余试验组不需要加阳性对照。(2)阳性对照推荐初始使用浓度为50 μM(推荐浓度50-250 μM,具体依细胞类型而定),工作液要现用现配,不要储存稀释后的溶液,阳性对照也可用不含酚红的10% FBS完全培养基稀释。 d) ROS探针准备:用无血清培养液稀释DCFH-DA,使其终浓度为10 μM。 e) ROS探针装载:去除处理药物,用无血清培养液洗涤细胞1-2次,加入适当体积稀释好的DCFH-DA工作液。需充分盖住细胞,例如:6孔板通常不少于1 mL/孔,96孔板通常不少于100 μL/孔,37℃细胞培养箱内避光孵育30 min。 f) 细胞清洗:用无血清培养液洗涤细胞1-2次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。 2.收集细胞后装载探针 (适用于贴壁细胞和悬浮细胞) a) 细胞准备:按照标准方法培养细胞,必须保证检测用细胞状态良好。按照适当方法,清洗并收集足量的细胞。 b) 药物诱导:将收集好的细胞悬浮于适量稀释好的药物,于37℃细胞培养箱内避光孵育,实际诱导时间可根据药物特性和细胞类型决定。 c) (选做)阳性对照:用无血清培养液稀释Positive Control (50 mM) 到常用工作浓度50 μM,加入细胞,37℃避光孵育30 min-4 h。为提高活性氧水平,不同类型细胞刺激时间存在差异,例如:HeLa细胞需处理30-60 min。 注意:(1)仅在阳性对照孔中加入,其余试验组不需要加阳性对照。(2)阳性对照推荐初始使用浓度为50 μM(推荐浓度50-250 μM,具体依细胞类型而定),工作液要现用现配,不要储存稀释后的溶液,阳性对照也可用不含酚红的10% FBS完全培养基稀释。 d) ROS 探针准备:探针装载前,用无血清培养液稀释DCFH-DA,使其终浓度为10 μM。 e) ROS探针装载:离心收集细胞去除处理药物,并用无血清培养液洗涤细胞1-2次,离心收集细胞,加入稀释好的探针,使其细胞密度为1.0×106-2.0×107,37℃细胞培养箱内避光孵育30 min。 注意:细胞密度需根据后续的检测体系,检测方法以及检测总量来进行调整。例如:对于流式分析,单管检测内细胞数目不少于104,也不可多于106。 f) 细胞清洗:用无血清细胞培养液洗涤细胞1-2次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。 3.荧光显微拍照 a) 对贴壁生长细胞(步骤1.f),细胞清洗后,加适量的无血清细胞培养液或PBS,在荧光显微镜下观察;对悬浮生长细胞(步骤2.f),取25-50 μL细胞悬液滴到一张显微载玻片上,再盖上一张盖玻片。 b) 荧光显微镜下,选用FITC滤光片观察荧光,去除背景观察荧光的变化。 4.流式细胞分析操作方法 a) 对贴壁生长细胞(步骤1.f),用胰酶消化制备成单细胞悬液;对悬浮生长细胞(步骤2.f),直接收集细胞。用0.5-1 mL PBS重悬细胞(0.5-1x105/mL); b) 流式细胞仪中,488 nm为激发波长,525 nm为发射波长,实时或逐时间点检测刺激前后荧光的强弱。 注意事项 1.阳性对照推荐初始使用浓度为50 μM(推荐浓度50-250 μM,具体依细胞类型而定)。通常刺激后30 min-4 h可以观察到显著的活性氧水平升高。对于不同的细胞,活性氧阳性对照的效果可能有较大的差别。如果在刺激后30 min内观察不到活性氧的升高,可延长诱导时间或适当提高活性氧阳性对照的浓度。如果荧光信号过强,可缩短诱导时间或适当降低活性氧阳性对照的浓度。 2.实验过程中,如果阴性对照细胞荧光也比较强,可以按照1:2,000-1:5,000稀释荧光探针DCFH-DA,使DCFH-DA的终浓度为2-5 μM。探针装载的时间可在15-60 min内适当进行调整,尽量缩短读片时的曝光时间,并且试验组、对照组曝光时间需保持一致。 3.Positive Control (50 mM) 仅仅用于作为阳性对照的样品,并非所有试验组样品中都需加入活性氧阳性对照。 4.探针装载后,一定要洗净未进入细胞内的探针,否则会导致背景较高。 5.尽量缩短探针装载后到检测所用的时间(刺激时间除外),以减少各种可能的误差。 |
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