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speculiar

银虫 (小有名气)

[交流] 请问谁用过GE的预装柱(镍柱) 已有3人参与

GE赠送的1ml用于纯化组氨酸融合蛋白的预装柱。
我用着感觉很不好,不知版内有哪位用过,是否好用,有啥经验可以传授的?
万分感谢,急于毕业,停滞在纯化这一步很久了。万分感谢~~~泪奔~~~~~~~~~
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jlc0225

至尊木虫 (著名写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
我们的镍柱也不好用,估计使用次数多了也不行
开始新的学习!
8楼2009-10-29 16:23:57
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zibeisha

木虫 (著名写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
支持,我也马上要做,希望大虾们多多支持交流!!!
有时我们无奈,有时我们迷茫,可是不管怎样,只要我们积极生活,命运就不会亏待我们。
2楼2009-10-27 22:39:43
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muchong5577

金虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
告诉你一个buffer
Elution Buffer是:20mM Sodium phosphate,500mM Nacl,500mM Imidazole,pH 7.4
3楼2009-10-28 01:35:28
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hhqu

新虫 (初入文坛)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
采用Ni柱对组氨酸标记蛋白质进行分离纯化的过程通常包括装柱、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤。
平衡:用5~10CV的平衡缓冲液平衡层析柱,至流出液电导和pH不变(与平衡液一致)。实际操作中,一般选用中性/弱碱性(pH 7~8)的高盐(0.15~1.0 M NaCl或其它中性盐)缓冲液。其中常用磷酸盐缓冲体系,如20 mM PB+0.5 M NaCl, pH 7.4。对于结合力较强的带组氨酸标记的蛋白质,平衡缓冲液中可加入低浓度(20~40 mM)的咪唑。
进料:样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制;低浓度样品溶液可用平衡液透析;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或微滤处理。进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。
为了减少杂蛋白在层析柱上的吸附,可在确保目标蛋白吸附的情况下适当增加样品缓冲液中的咪唑。对于包涵体蛋白,相应地可在平衡、上样和洗脱的缓冲液中加入8M Urea或6M Gua-HCl。
淋洗:上样完毕后继续用平衡缓冲液淋洗至基线。
洗脱:洗脱一般有两种方式,一是采用竞争试剂,如咪唑(0~0.5M)、组氨酸(0~0.05M)、氯化铵(0~2M)等将蛋白质从柱子上置换下来;二是减小pH值,洗脱目标蛋白,大多数蛋白质在pH 4~6的范围内可被洗下来。用竞争试剂咪唑或减小pH值的方法洗脱蛋白质,金属离子仍结合在柱子上;若用竞争试剂组氨酸或氯化铵洗脱蛋白质,会将金属离子和蛋白质的复合物一起洗下来。
洗脱缓冲液中必须加入0.15~1.0 M NaCl以消除离子交换作用。梯度洗脱最好在起始平衡液的恒定pH下进行,可采用线性梯度或阶越式梯度洗脱。
生物制品 生化分离
4楼2009-10-28 10:00:40
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