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tomjiwen金虫 (小有名气)
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蛋白还原烷基化酶解后HPLC分段,为什么一直分不出该有的峰呢?求助求助求助
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求助各位大神,小弟第一次做蛋白,是真菌蛋白,本想做iTRAQ方法,但因为第一次做,怕浪费试剂,就先采用很多文献里的方法操作,具体步骤如下: 1.蛋白提取,采用真菌蛋白提取试剂盒,离心取上清,BCA法测蛋白含量,SDS-PAGE蛋白提取应该没问题。 2.取200ug蛋白,TCA沉淀1小时,丙酮洗涤沉淀2小时,丙酮在洗涤沉淀过夜 3.沉淀用0.1%SDS-TEAB超声溶解,挥去丙酮,加TCEP至10mM,60度1h,加IAA至10mM,暗处反应30min,加酶4ug,37度12h,补加2ug,37度12h。 4.加10%TFA至0.5%,离心取上清。上清直接上样,或者冻干用流动相溶解后上样。 5。HPLC分段采用碱性条件,C18色谱柱,A相10mM甲酸铵水溶液,PH9,B相为A相加4倍乙腈。 上样分析,发现除了前6分钟有大的溶剂峰,中间有个固定的大峰外(空白在此处只有个很小的峰),其他时间跟空白相比只有非常少的小峰,响应值很低。 调过流动相PH为10,也一样跑不出来。 采用酸性液相条件的SCX柱分离也一样几乎没有东西。样品浓度的话,之前也做过500ug蛋白合并在一起的,但也基本相同,没有什么峰出现。 如果需要色谱图,我可以附上 以上就是我的方法与结果,请问各位大神,我到底哪里做错了呢 |
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