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forget1997

银虫 (小有名气)

[交流] 酶切、连接求助

我计划用双酶切我的PCR产物,和pGL3质粒,然后转化大肠杆菌JM109.如果顺利,转染重组质粒进入HepG2细胞。我有如下问题请教大家:
(1)酶切之后,是否要用SAP去掉磷酸集团?有的文献说要,但是有的说不用。
(2)酶切的时候,大家一般用多少体系?似乎大部分人都用50-100ul。
(3)连接的时候,PCR产物、pGL质粒比例一般是3-10:1.这个比例是摩尔数比还是DNA总量之比?
(4)HepG2细胞,我看有人用RPMI1640养,有人用DMEM养。不同的培养基,是否会对最终结果有影响?
(5)转染的时候,对细胞数是否有要求?
Thanks!
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forget1997

银虫 (小有名气)

我又看到一个问题:
没有转染质粒的细胞(不是细菌),能生存下来吗?
FuGene说可以加入一些东西,使得没有转染的细胞死掉。这是如何实现的?
5楼2008-12-15 12:49:35
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查看全部 6 个回答

三磷酸腺苷

铁杆木虫 (职业作家)

★ ★
forget1997(金币+2,VIP+0):Thanks!
1、酶切后有自连的可能性(如切出来是双平端),就要载体去磷酸化防止自连
2、50足矣,前提是质粒、片段浓度够高,还有清洁试剂盒回收率高
3、摩尔比
4、这个就很难讲了,你一直用什么养就接着用什么养吧,中途换培养基是绝对会影响的
5、有,不同转染试剂有不同要求。看说明书或者问他人经验。宁可种稀一点然后让它长,把握个转染浓度。不要一开始种太密结果一转就死了。
2楼2008-12-15 08:53:00
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forget1997

银虫 (小有名气)

谢谢楼上的。

我用的是粘性末端,也要去磷酸化吗?去磷酸化,是用SAP吗?
3楼2008-12-15 10:09:08
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richart

金虫 (正式写手)

★
forget1997(金币+1,VIP+0):thanks!
去磷酸化后自连效率低,不去也没关系,双酶切一般没问题的。去磷酸化没什么影响,反正我从不做这一步,连接挺好的。
4楼2008-12-15 10:56:34
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