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自己总结的western操作步骤，简单实用 1．制胶及上样： （1）配制12%SDS-PAGE分离胶，混匀后注入边条厚度为2mm的两块洁净玻璃板间，其上加一薄层异丙醇，室温下静置至凝固。 （2）待分离胶完全聚合后，倾去其上的水层，以吸水纸吸净残余液体，插入加样梳，缓缓加入浓缩胶，使其充满加样梳间的空隙，室温下静置。待胶完全聚合。 （3）将凝胶固定于电泳装置上，上、下槽加入电泳缓冲液。 （4）小心拔去加样梳，使加样孔竖直，以电泳缓冲液冲洗加样孔数次。 （5）分别取50μg蛋白量的细胞总蛋白样品及蛋白质分子量Marker，按4：1体积比加入5′样品缓冲液，以1′样品缓冲液？配平上样体积（总体积20μ1）后，于沸水浴中煮3min使蛋白变性。 （6）将处理好的样品按照预定的顺序加入分离胶的上样孔中。 2．电泳 （1）接通凝胶电泳仪的电源，初始电压70V。（约30分钟） （2）溴酚蓝染料的前缘进入分离胶上缘后提高电压至160V，继续电泳直至溴酚蓝泳出分离胶的下缘。（约60分钟） 3．转膜 （1）从玻璃板中取出凝胶，将其浸泡于转移缓冲液中。 （2）取与胶同样大小的硝酸纤维素膜，以95%乙醇浸泡5秒钟后浸泡于转移缓冲液5分钟以上待用。 （3）按顺序在转移夹内放置预先经转移缓冲液浸泡的海绵、三层滤纸、硝酸纤维素膜、凝胶、三层滤纸、海绵，保证每层之间没有气泡。 （4）将转移夹放入转移槽，膜在正极、胶在负极，接冷却循环水，90V稳压转移2小时。 4．染色 （1）将硝酸纤维素浸入丽春红使用液中，振摇染色5-10min。 （2）蛋白质条带出现后，用去离子水洗去硝酸纤维膜上的丽春红底色。 （3）按照蛋白质分子量Marker指示的位置剪下目的条带所在的硝酸纤维素膜。 5．封闭 把硝酸纤维素膜浸入5%脱脂奶粉，室温摇动2小时。 6．洗膜与杂交 （1）以T-TBS洗膜，10分钟′ 3次。 （2）第一抗体封闭： SPARC单抗以T-TBS 1：200稀释，按0.1ml/cm2加入封有硝酸纤维素膜的杂交袋中，去除所有气泡，4℃振摇过夜。 （3）以T-TBS洗膜，10分钟′ 3次。 （4）第二抗体封闭：辣根过氧化物酶（HRP）标记的山羊抗兔IgG抗体（1：4000），按0.1 ml/cm2加入封有硝酸纤维素膜的杂交袋中，去除所有气泡，室温下振摇60分钟。 （5）以T-TBS洗膜，10分钟′ 3次。 7．化学发光与曝光 （1）将化学发光试剂盒中的两种试剂各取0.5ml，按1：1的比例混合，在暗室中与硝酸纤维素膜摇动孵育1分钟。 （2）用滤纸沾干膜上的液体，用保鲜膜包好，用感光胶片在压片盒中曝光约1分钟。 （3）曝光后的感光胶片在显影液中显影约30秒钟，定影液中定影1分钟，用水冲洗后晾干。 （4）根据曝光情况调整曝光时间，重复压片、显影及定影，选择满意的胶片。 （5）重复实验三次。 |
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