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自己总结的western操作步骤,简单实用 1.制胶及上样: (1)配制12%SDS-PAGE分离胶,混匀后注入边条厚度为2mm的两块洁净玻璃板间,其上加一薄层异丙醇,室温下静置至凝固。 (2)待分离胶完全聚合后,倾去其上的水层,以吸水纸吸净残余液体,插入加样梳,缓缓加入浓缩胶,使其充满加样梳间的空隙,室温下静置。待胶完全聚合。 (3)将凝胶固定于电泳装置上,上、下槽加入电泳缓冲液。 (4)小心拔去加样梳,使加样孔竖直,以电泳缓冲液冲洗加样孔数次。 (5)分别取50μg蛋白量的细胞总蛋白样品及蛋白质分子量Marker,按4:1体积比加入5′样品缓冲液,以1′样品缓冲液?配平上样体积(总体积20μ1)后,于沸水浴中煮3min使蛋白变性。 (6)将处理好的样品按照预定的顺序加入分离胶的上样孔中。 2.电泳 (1)接通凝胶电泳仪的电源,初始电压70V。(约30分钟) (2)溴酚蓝染料的前缘进入分离胶上缘后提高电压至160V,继续电泳直至溴酚蓝泳出分离胶的下缘。(约60分钟) 3.转膜 (1)从玻璃板中取出凝胶,将其浸泡于转移缓冲液中。 (2)取与胶同样大小的硝酸纤维素膜,以95%乙醇浸泡5秒钟后浸泡于转移缓冲液5分钟以上待用。 (3)按顺序在转移夹内放置预先经转移缓冲液浸泡的海绵、三层滤纸、硝酸纤维素膜、凝胶、三层滤纸、海绵,保证每层之间没有气泡。 (4)将转移夹放入转移槽,膜在正极、胶在负极,接冷却循环水,90V稳压转移2小时。 4.染色 (1)将硝酸纤维素浸入丽春红使用液中,振摇染色5-10min。 (2)蛋白质条带出现后,用去离子水洗去硝酸纤维膜上的丽春红底色。 (3)按照蛋白质分子量Marker指示的位置剪下目的条带所在的硝酸纤维素膜。 5.封闭 把硝酸纤维素膜浸入5%脱脂奶粉,室温摇动2小时。 6.洗膜与杂交 (1)以T-TBS洗膜,10分钟′ 3次。 (2)第一抗体封闭: SPARC单抗以T-TBS 1:200稀释,按0.1ml/cm2加入封有硝酸纤维素膜的杂交袋中,去除所有气泡,4℃振摇过夜。 (3)以T-TBS洗膜,10分钟′ 3次。 (4)第二抗体封闭:辣根过氧化物酶(HRP)标记的山羊抗兔IgG抗体(1:4000),按0.1 ml/cm2加入封有硝酸纤维素膜的杂交袋中,去除所有气泡,室温下振摇60分钟。 (5)以T-TBS洗膜,10分钟′ 3次。 7.化学发光与曝光 (1)将化学发光试剂盒中的两种试剂各取0.5ml,按1:1的比例混合,在暗室中与硝酸纤维素膜摇动孵育1分钟。 (2)用滤纸沾干膜上的液体,用保鲜膜包好,用感光胶片在压片盒中曝光约1分钟。 (3)曝光后的感光胶片在显影液中显影约30秒钟,定影液中定影1分钟,用水冲洗后晾干。 (4)根据曝光情况调整曝光时间,重复压片、显影及定影,选择满意的胶片。 (5)重复实验三次。 |
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