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北京石油化工学院2026年研究生招生接收调剂公告
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嘉笛

木虫 (小有名气)


[交流] 求助:关于质粒构建

最近在构建质粒,载体中已插入一个目的基因片断(目的基因两端有AatⅡ酶切位点),现想通过控制酶切反应时间得到AatⅡ单切的载体,胶回收、去磷酸化后再与目的片段连接,这样就可以得到含有两个目的基因片段的质粒。但做了几次一直没有转化成功,还请高手指点,具体操作如下:
抽提作为载体的质粒(6ml菌液)80ul双蒸水溶解
   酶切 90ul体系:
buffer 9ul,0.1%BSA 9ul,AatⅡ 1.5ul,质粒70ul  
    酶切5min,65度放置10min终止反应,电泳后胶回收目的条带,30ulElution buffer洗脱后去磷酸化,酚氯仿处理后无水乙醇沉淀(因回收到的量较小-20度放置1h 离心25min)看不到沉淀物,70%乙醇洗后直接加12ul的目的基因片段进行连接(20ul体系)。目的片段也为电泳胶回收的
   用的是JM109做感受态,氨苄平板
      做了好几次都没有菌长出来,不知道此方法是否可行问题到底出在哪里,因为刚接触分子生物学不久还有很多地方不懂,还请各位高手不吝赐教,先在此谢过
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amberking


司马诸葛(金币+1,VIP+0):谢谢交流 8-2 21:41
去磷酸化后回收跑电泳了没?如果没跑电泳你怎么知道就回收上了?
酶切我们经常过夜都没太大影响,不过做不出来还是小心点按照说明来吧
还有一般去磷酸化后连接效果的确挺低的,有一次我做只长了一个斑,不过那个就是阳性的,哈哈,希望你也有这个好运气

还有些小小细节,因为你的产物都是回收的,尤其是目的片段还要纯化后回收,你最好确定里面没有残留的70%乙醇,不然再好的酶也会挂

[ Last edited by amberking on 2008-10-23 at 14:41 ]
5楼2008-10-23 14:37:09
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greenspringmi

银虫 (正式写手)


司马诸葛(金币+1,VIP+0):谢谢交流 8-2 21:41
有两点建议:1、酶切体系一般为20ul,当需要的酶切产物多时,可以增加酶切的管数,不建议扩大体系;
2、Aat II的最适温度是37°,酶切的时间一般为3h;
3、酶切后,建议立即跑胶回收目的条带;
2楼2008-10-21 08:52:31
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xiefl1984

木虫 (小有名气)


因为不能使之酶切完全,所以要控制时间;
酶切反应体系增大会有什么影响呢?
3楼2008-10-21 09:02:49
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zhuyeqing8570

铜虫 (小有名气)

我的酶切体系都是20微升,有时候会切的时间长一些,不知道有没有影响
做本色真实的自己;要么努力,要么放弃
4楼2008-10-23 11:39:39
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