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秉秉的法兰西

新虫 (小有名气)

[求助] 拟南芥根的半薄切片 已有2人参与

做了几次半薄切片,细胞变形,并且有的破碎了。步骤如下,请问问题出现在哪里?谢谢
一、第一次固定
    固定液:2%戊二醛溶液 +4%多聚甲醛 in 25mM CaCo buffer pH 7.2(最关健步骤)
    室温15 min,固定时,应让材料沉底。
    4度过夜
二、清洗
    用25 mM CaCo buffer清洗4次,每次10min。
三、清洗
    用水洗4次,每次10分钟(务必洗干净)。
四、梯度脱水
    Dehydrate the samples by the following steps:
    25% 丙酮 at RT for 30 min (x 1)
    50%丙酮 at RT for 30 min (x 1)
    75%丙酮  at RT for 30 min (x 1)
    100%丙酮 at RT for 30 min (x 2)
五、渗透
    Change the Spurr in the following steps:
    25% Spurr in acetone at RT for 45 min
    50% Spurr in acetone at RT for 45 min
    75% Spurr in acetone at RT for 45 min
    100% Spurr in acetone at RT for 45 min
    100% Spurr in acetone overnight at 4oC
八、包埋
   Change 100% Spurr in acetone once more, and then put the samples into beemcapsules and then incubate at RT for 4 h. Then imbedding the beemcapsules for 16 hours at 70 度。
九、切片
   玻璃刀切
十、复染
   亚甲基蓝染色,洗脱三次
   
CaCO Buffer配方:
包埋剂的配比:10 g VCD(ERL), 6 g DER, 26 g NSA,轻轻搅拌至均匀,加0.4 g DMAE,再次搅拌均匀。(注意防水,不宜长期存放)
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嘘嘘巡洋舰

银虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 秉秉的法兰西 at 2015-10-30 00:06:51
我其实是做半薄切片,没用电镜看超微结构,我还有一个问题就是细胞变形,这也跟脱水梯度和时间有关系吗?我有一个染gus的幼苗,因为要用70%的乙醇洗脱叶绿素,所以我想用FAA固定,然后用乙醇脱水,再用spur可以吗? ...

乙醇和spurr之间需要纯丙酮过渡。最好不要上来就用70%乙醇脱色,会造成样品脱水严重,可以从30%或50%梯度脱起
7楼2015-10-30 14:44:17
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查看全部 9 个回答

lion1998

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

切破最直接的原因是有水,说明脱水不干净,建议增加丙酮梯度脱水为30,50,75,85,90,95,100,100,同时所有步骤进行时,尽量在有抽湿机环境下,湿度低于30%。另外,spurr切片不应该有一步锇酸固定吗?

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» 本帖已获得的红花(最新10朵)

Iamaleafonthewind.
2楼2015-10-29 19:58:45
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秉秉的法兰西

新虫 (小有名气)

送红花一朵
引用回帖:
2楼: Originally posted by lion1998 at 2015-10-29 19:58:45
切破最直接的原因是有水,说明脱水不干净,建议增加丙酮梯度脱水为30,50,75,85,90,95,100,100,同时所有步骤进行时,尽量在有抽湿机环境下,湿度低于30%。另外,spurr切片不应该有一步锇酸固定吗?
...

我其实是做半薄切片,没用电镜看超微结构,我还有一个问题就是细胞变形,这也跟脱水梯度和时间有关系吗?我有一个染gus的幼苗,因为要用70%的乙醇洗脱叶绿素,所以我想用FAA固定,然后用乙醇脱水,再用spur可以吗?

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3楼2015-10-30 00:06:51
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lion1998

金虫 (正式写手)

1.我们无论是半薄还是超薄,都需要锇酸固定,戊二醛至多算是预固定
2.细胞变形的原因比破裂复杂,无锇酸,脱水太快,刀口锋利程度,等等,都需要注意
3.理论上说,只要能与spurr和水互溶的试剂均可以用来脱水,但需要考虑乙醇的脱水效果不如丙酮

发自小木虫Android客户端
Iamaleafonthewind.
4楼2015-10-30 06:01:02
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