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Mr_wang2006

木虫 (小有名气)

Scientist

[交流] 【请教】神经干细胞培养问题

最近,我开始进入神经干细胞方面的研究。首先是查阅大量神经干细胞培养的方法和protocol,然后进行胚胎12~14天的胎鼠/小鼠神经干细胞培养,7~8天后进行传代,现把在实验中遇到的问题发出,向大家请教,谢谢。具体疑问如下:

1、一般胚胎神经干细胞培养原代接种密度是2*10E5/ml,但我的神经干细胞必须达6*10E5/ml,甚至更高,才能出现漂亮的神经球,不知什么原因?
2、我的培养液是DMEM/F12+N2+肝素钠+bEGF+FGF+Glu+双抗,有人建议我尽量再加上B27,否则成球不好,我不知两者有什么区别?还有文献加LIF,有什么作用?
3、传代时用胰酶硝化37度10 min,再用胰酶抑制剂终止,接种时发现细胞形态与原代细胞不太一样,呈现条索状,且遮光性不好,不知怎么造成?
4、传代培养24 h发现所有培养皿“神经球”出现贴壁,更奇怪的是球四周长了很长的绒毛,但中间质地同原代神经球,不知什么原因?

因实验需要,急需解决问题,麻烦高手赐教,我先谢@
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jiangy0122

荣誉版主 (著名写手)

我不是高手,只是曾经做过而已。其实关于神经干细胞的培养方法,现在已经比较成熟,按照常规方法培养,问题应该不大,关于密度,确实需要达到1*10E5/ml左右,而培养液中加上b27效果不错(我就用过)不过我没有加上肝素钠和双抗等。我在传代时没有使用胰酶消化了(悬浮培养,我没用这步),关于贴壁出现放射状的现象,估计是有一定的分化了,或者有血清干扰,或者神经球太大,而贴壁。
好好学习,天天向上
2楼2008-06-24 10:19:52
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Mr_wang2006

木虫 (小有名气)

Scientist

通过查找文献和论坛学习,我来回答以上问题,若有不同意见请指正:
1、可能与取材部位有关,我取材时范围较大,含有大量的杂细胞,于是必须用大量计数细胞来培养成球;也可能是我培养的NSC的细胞存活下降所致。
2、有人说一般神经干细胞原代培养最好用B27,传代后可改用N2(原因有待追究)
3、已经订购invotrigen公司的胰酶替代物trypLE TM express,不需进行终止反应,且对神经干细胞损伤不大,增加细胞存活。
4、传代细胞贴壁神经球已经发上分化,许多神经干细胞已经从球内迁移出而进行分化,可能与没有半量换液所致,直接用新鲜培养液培养传代。

我的理解不知对不对,请大家指正。
多付出、多交流、多加压、多谦虚;富不能忘本,穷不能失志
3楼2008-06-24 11:15:29
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