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toyou312

新虫 (初入文坛)

[交流] 求助!!NI亲和层析纯化

我做的是外源蛋白的原核表达与纯化。
使用的表达载体是pET32,融合蛋白:融合Trx,带有6*His标签,设计有肠激酶酶切位点。简式:Trx--6*His--肠激酶位点--目的蛋白。
蛋白表达后,先用NI亲和层析树脂吸附融合蛋白,用50mM、100mM、150mM咪唑缓冲液洗脱蛋白,收集融合蛋白。透析出去缓冲液,用肠激酶酶切,生成Trx--6*His--肠激酶位点和目的蛋白。然后再次用NI亲和层析树脂吸附Trx--6*His--肠激酶位点,留下目的蛋白。将目的蛋白冷冻干燥浓缩,SDS-PAGE检测。
检测发现,收集的融合蛋白主要在50mM、100mM咪唑缓冲液时洗出,以融合蛋白为主,但是存在少量杂蛋白,因为以后蛋白要用于药用,老板要求纯度要高,怎么除去?
更主要的是第二次亲和层析后收集到的目的蛋白,经过冷冻干燥后,存在大量杂蛋白,目的蛋白含量还达不到50%。我的目的蛋白分子量4200D,不太容易分离纯化,不知道大家有没有好的有效的方法,至少也要把目的蛋白弄到电泳纯吧!!
谢谢各位高手!!
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wujiequn

捐助贵宾 (小有名气)


reasonspare(金币+1,VIP+0):xiexie 欢迎常来,.
把最后的蛋白过凝胶柱S200或S300,一切问题都可以解决。
2楼2008-02-19 20:58:09
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superwheat

银虫 (正式写手)


reasonspare(金币+1,VIP+0):xiexie 欢迎常来,.
制备型液相,反相柱也好分子筛也好
其实意思就是利用不同的分离原理再过一次柱,收集目标产物而已
3楼2008-02-20 07:52:42
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lxj341401

至尊木虫 (著名写手)

★ ★
reasonspare(金币+1,VIP+0):thx
先用低于50mM咪唑缓冲液洗去未结合和结合能力弱的杂蛋白,然后用100mM或者更高浓度咪唑缓冲液洗脱出融合蛋白,而且最后应该还要除去肠激酶。
4楼2008-02-20 10:54:40
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wangjun0457

银虫 (小有名气)

Pharmacia有一款分离小肽用的分子筛柱,也许可以试试。
5楼2008-02-26 14:06:19
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xyfu

金虫 (小有名气)


reasonspare(金币+1,VIP+0):xiexie 欢迎常来,.
一些硫氧还融合蛋白能够继承硫氧还蛋白的热稳定性,先考察一下你的硫氧还融合蛋白是否有热稳定性,如果有,可以先热处理除去大部分杂蛋白
6楼2008-03-01 15:03:52
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skkyy88888

铜虫 (著名写手)


reasonspare(金币+1,VIP+0):xiexie,
超滤后结合着离子株继续纯化,效果明显。
7楼2008-03-01 15:22:57
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ganchao1776

至尊木虫 (职业作家)

你的目的蛋白也太小了,还不能40个氨基酸,也只能叫多肽了吧!?

Trx上没有肠激酶酶切位点吧,有的话你的方案就要从头来了!

如果不是我上面说的,那你纯化的问题主要集中在第一次过NI柱,建议你上样量再少一点,50mM多洗一会儿,这样能保证杂蛋白与融合蛋白"彻底"分开
另外按你的实验方案肠激酶肯定在你最后的产品中的,你要主意不要让这个成了你产品中杂质的主要成份
8楼2008-03-02 13:39:52
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jfchang

新虫 (初入文坛)

去除杂蛋白的方案最好是在洗涤阶段提高NaCl浓度,最高可以提高到250mM,洗涤杂蛋白的效果很明显。另外,50,100mM咪唑也可以显著的降低杂蛋白背景污染,但如你上面所述,你的目的蛋白已经在这两个浓度下洗脱下了,所以最佳方案还是在洗涤液中提高NaCl浓度,降低咪唑浓度,这样可能有助于避免杂蛋白的污染。
9楼2008-03-04 11:47:32
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