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刚刚找到，与大家分享BandScan5.0
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刚刚找到，与大家分享 使用迅雷，新建任务：http://www.seekbio.com/down.asp?id=254&no=1 下载BandScan5.0 破解程序在附件 使用方法网上随处可down 如果找不到，告诉我，Email给你word版 我的56邮箱共享中全有，yang22181@56.com [ Last edited by yang22181 on 2007-10-25 at 11:47 ] |
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lwf991229(金币+2,VIP+0):很好,很详细...
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Bandscan 5.0 安装说明(pinghw提供)（无图） 双击 解压缩到指定文件夹，找到 图标，双击后按提示进行安装，系统默认安装在c:\program file\Glyko\Banscan文件夹中，安装完成后将patch文件（即 ）复制到c:\program file\Glyko\Banscan文件夹中，双击 ，点击patch即可。 Bandscan 5.0 使用说明（由palmyard战友提供） 1. 安装好以后就会在桌面上出现BandScan的图标。双击打开。 2. 打开后的界面如图。 3. 打开一张扫描好的电泳图。BandScan可以识别TIF和JPG格式的图片，很方便。打开工具栏上的file/open tiff，jpg file format，选中待分析的图片。 4. 打开。这时候凝胶图像显示出来。1道是低分子量标准，2道是诱导表达的蛋白，3道是未诱导的对照。旁边有一个图像预览窗口Image Preview，可以看到，除了cancal，其它命令框都是灰色的（不可操作）。其实这里是要你先选定一个图像处理的范围（select rectangle）。 5. 从凝胶图左上角按住鼠标左键划到右下角，松开鼠标，划出的长方形框包扩了整个待分析的范围。这时，命令框内均变成黑色的（可以操作）。上面那个undo rect可以取消选框，下面的image options可以选择是否和如何旋转图像。本例中均不改动，直接单击accept selected region。 6. 出现color to signal selections复选框。这个是选择信号检测方式，直接用默认的original image，或选择gray scale（灰阶）。本例中不改动，单击use current image。 7. 出现如下分析框。它是自动转换成灰阶的。其左上角的数字是鼠标所在的坐标和灰度值。移动鼠标就可以看到它的变化。 8. 现在让BandScan来分析一下电泳条带吧：）打开工具栏上的band finding/find bands，出现一个让你选择有几条泳道的框selecting number of lanes，我们设置成3道。 9. 看，每一个条带都自动被框起来了：）红色+记号是条带的中心位置，兰色竖线是泳道位置。同时出现了一个复选框select more or select few bands。可以根据总灰度、最大灰度和大小为标准来自动选择蛋白条带。拉动左边的滚动条，可以增加或减少条带的数量。选好后单击ok。 10. 现在就可以看看蛋白的表达量了。打开window/band table。出现了一个band location的表格。把它最大化，放到右边。这里的数据是每个条带的中心位置（红色+的位置）。 11. 在band location的数据类型data type中，选择percent signal，就会出现各个条带灰度值占本泳道条带总灰度值的百分比。 12. 单击自己的表达条带，则条带中心的+和相应的百分数的背景都会变成绿色。我表达的融合蛋白约占细菌总蛋白的29.8%。我们要的数据就得到了。自己再重复一下整个过程，会发现，原来是如此简单：） 总结：真的只是领进门。因为BandScan绝不仅仅是这么简单，它还可以做很多事情。比如通过设定一个条带的量（标准）来推断表达蛋白的量。比如用手动方式加入未被自动选择的条带，等等。举个例，我们发现我的目的条带上面有几个浅条带没有被选上，可以用band finding/manually insert a band命令把它们选上。这时，条带百分数也会随之改变。 [ Last edited by yang22181 on 2007-10-25 at 11:50 ] |
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