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蛋白破碎后,上清的活性很低
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各位好心人,我最近在做蛋白表达。全细胞的酶活很高,用超声破碎后,破碎后上清活性很低,但沉淀的活性很高。蛋白电泳结果也是一样的,上清的条带很暗,沉淀很粗。我想应该是破碎不完全吧。我的破碎条件是这样的:破碎1s,暂停2s。总共这样循环破1h,功率45%。 各位做蛋白表达的同志们,能否给我些建议,我想我这应该不是形成包涵体吧,但是都破碎了1h了,沉淀中还是有好多目的蛋白。 |
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凌波丽
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【答案】应助回帖
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蛋白质沉淀就一定没有活性?---------搞笑吧! 固定化酶有没有生物学活性?? PrP(scrapie)有没有生物活性??: 参考文献举例: 【荷兰】曹荻秋(Linqiu Cao) 著,杨晟、袁中一 译,载体固定化酶----原理、应用和设计,化学工业出版社,2008; Stanley B.Prusiner,Prion Biology and Diseases,Cold Spring Harbor Laboratory Press,2004,Second Edition. ----------如果淀粉状沉淀的PrP(scrapie)没有生物活性,那么克-雅氏综合征和疯牛病都不存在了!而且如果有人能够证明蛋白质沉淀就一定没有生物活性,那么其足以否定Stanley B.Prusiner的1997年诺贝尔化学奖!!我不知道论坛现在就能有如此大神!! |
24楼2013-05-10 13:20:28
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3楼2013-05-07 21:57:30
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【答案】应助回帖
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myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰手有余香,鼓励应助,分子生物版块期待你的更多精彩。同样期待你更详细的应助指导。 2013-05-08 09:12:08
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既然不清楚“固定化”酶本身与非酶的介质之间的链接到底是什么?那么可以先用破坏非共价键的把“固定化”酶从介质上解脱下来。比如用加入一些表面活性剂破坏“固定化”酶本身与非酶的介质之间的疏水相互作用,然后离心试试看。比如可以用低浓度的去污剂(浓度不大于2%的Triton X-100或浓度不大于0.5%SDS)洗涤样品(上样洗脱时);增加洗脱液的盐浓度(氯化钠溶液低于2mol/L);上样液里加入30%-50%的甘油,已减弱疏水相互作用,然后过层析住加以分离;或者用硫酸铵沉淀蛋白质-----分离蛋白质与生物大分子,而后除去硫酸铵再用用层析;如果酶石墨蛋白质则可用丙酮分级分离;另外疏水层析和离子交换树脂也可以用上;实在分离不开就用SDS-PAGE电泳分离,然后回收凝胶中 的蛋白质再进行复性。 |
4楼2013-05-07 22:09:57











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