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minmin-911

铜虫 (小有名气)

[求助] HPLC 用C18反相柱鉴定蛋白纯度,蛋白峰与溶剂峰混在一起怎么办?已有1人参与

用HPLC C18反相柱鉴定纯化蛋白质纯度,如图所示,是不是我的目标蛋白的极性太强,导致与溶剂峰混在一起,出峰太早?28min的峰为流动相的峰。那该怎么解决这个问题呢?菜鸟求救啊!
图1为空白对照: Tris-HCL 含NaCl 0.12M (pH 7.2)
图2为样品溶于Tris-HCL 含NaCl 0.12M (pH 7.2)

HPLC柱子:C18, 4.6 mm × 250 mm, 300 A
洗脱液:
Solvent A,1%乙酸水溶液
Solvent B,100%甲醇
洗脱条件:
0-10min 10%-30% B
10-20min 30%-70% B
20-40min 70% B
流速为 1.0 ml/min
检测波长为:280 nm
目标蛋白分子量为25KDa, pI为5左右。

图1 对照.jpg



图2 样品.jpg
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刘小益

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
我觉得如果是你的蛋白质极性太强,你可以试着往流动相中加入一些离子对试剂,如TFA等,对于蛋白质的保留时间跟峰型都有较大的影响。同时对于蛋白质的检测波长,建议使用214nm,这个为酰胺键的吸收峰,对于蛋白质这个位置的吸收更强~~
实验室小打杂
5楼2012-10-31 14:56:13
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刘小益

金虫 (小有名气)

引用回帖:
8楼: Originally posted by jixiaoman12 at 2014-08-23 17:01:21
请教你一个有关色谱柱的问题 凝胶色谱柱TSKgel2000SWXL和C18蛋白柱在分析蛋白质上有什么不同吗...

凝胶色谱柱是个体积排阻色谱柱,这种分离模式能很好的保持蛋白活性,也可以对蛋白进行质量分级,但是分离效果不好~C18柱分离效果比较好,但是蛋白保留太强,容易引起柱残留,有些蛋白会不可逆的被吸付,建议使用C4的反相柱~~
实验室小打杂
9楼2014-08-23 21:54:55
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