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求教用wWF抗体鉴定内皮细胞的方法
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最近我从大鼠心脏和脑中分离到内皮细胞,具体是采用贴块法,即将剪碎的组织块黏附于细胞瓶上,利用内皮细胞迁移的特性分离出内皮细胞。 在完成这一工作后,我需要鉴定分离出的是否是内皮细胞。很多文献采用vWF抗体和免疫组织化学或免疫荧光的方法来鉴定内皮细胞。我订购了vWF抗体,同时采用了这两种方法鉴定大鼠的心脏和脑血管内皮细胞,具体方法如下: ABC法检测内皮细胞vWF的表达 实验前24小时将原代内皮细胞1:3传代后接种于胶原或明胶包被的24孔板。 (1) 去除细胞培养基,用PBS洗涤1次; (2) 用-10℃甲醇4℃固定5min,用PBS洗涤3次; (我也试图用丙酮固定细胞,但因为它能腐蚀细胞培养板而放弃) (3) 加入用PBS稀释的0.5%的H2O2,室温处理10min,用PBS洗涤2次共5min; (4) 用含1.5%山羊血清的PBS 室温封闭20min,去除血清; (5) 用含1.5%山羊血清的PBS 1:1000稀释兔抗人vWF抗体(Abcam ab6994),同时设置仅加1.5%山羊血清的对照,; (6) 用含1.5% 山羊血清的PBS配制0.5%的生物素标记的羊抗兔抗体(Vector Laboratories PK-4001),室温孵育30min,用PBS洗涤2次共5min; (7) 用PBS配制含1% A和B的ABC试剂(Vector Laboratories PK-4001),室温孵育30min,用PBS洗涤2次共5min; (8) 用1mL双蒸水配制含1滴A液、B液和C液的过氧化酶底物(博士德AR1022),室温孵育10~30min,用双蒸水洗涤2次共5min; (9) 光学显微镜下观察记录。 间接免疫荧光法检测内皮细胞vWF的表达 实验前24小时将原代内皮细胞1:3传代后接种于胶原或明胶包被的24孔板。 (1) 去除细胞培养基,用PBS洗涤一次; (2) 4%多聚甲醛室温下固定30min,用PBS洗涤3×5min; (同事建议用0.2%的Triton透化,不知是否有帮助) (3) 用含5%牛血清白蛋白(BSA)的PBS 37℃封闭1h; (4) 用含1% BSA的PBS 1:400稀释兔抗人vWF抗体(Abcam ab6994),同时设置仅加1% BSA的对照,37℃孵育2h或4℃孵育过夜,用含0.05% Tween20的PBS洗涤3×5min; (5) 用含1% BSA的PBS 1:100稀释FITC标记的羊抗兔抗体(Zymed laboratories),37℃避光孵育1h,用含0.05% Tween20的PBS洗涤3×5min; (6)用1:2000稀释的Hoechst33258室温复染细胞5min,用含0.05% Tween20的PBS洗涤3×5min; (7)荧光显微镜下观察记录。 结果两种方法均未检测到阳性信号。由于想验证是否是方法的问题,我购买了小鼠胰岛内皮细胞系MS1作为阳性对照,因为它是国内仅有的可以购买到的内皮细胞系并据ATCC介绍表达vWF。然而我采用上述的方法均未检测到阳性信号,同时我采用了国产的wWF抗体重复这些实验也没有检测到阳性信号。 由于我对内皮细胞鉴定的方法并不熟悉,因此请有相关经历的同行看一下我采用的实验程序,是否有可能的问题,同时对进一步的实验提出建议。 谢谢! |
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