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【原创】细胞培养技术自己的总结
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贴壁细胞传代培养相关技术 (一)器材设备 培养瓶,吸管,橡皮头,离心管,广口瓶,滤器(大小),针管,冻存管,高压消毒器,培养箱,无菌工作台,CO2气罐,相差倒置显微镜,4℃冰箱,20℃冰箱,pH调节仪 (二)试剂配制 1)培养基的配制 使用前,加入小牛血清,使其浓度为10% 2)PBS配制(1000ml) NaCl 8.5g KCl 0.2g Na2HPO4•12H2O 2.85g KH2PO4 0.27g 上述试剂称量后加入800ml双蒸水中,搅拌至完全溶解,调节pH=7.2,用1000ml量筒定容,过滤除菌,4℃保存 3)胰酶配制 配制PBS液体100ml,0.25g胰酶(粉剂),EDTA 0.02g 加入其中,搅拌至完全溶解(约4小时,期间放入4℃冰箱一次,全程冰袋保护),调节pH=7.5,然后放入冰箱4℃过夜,次日过滤(或次日再调pH值过滤) 4)抗生素配制 80万单位青霉素+4ml PBS 100万单位链霉素+5ml PBS后取出4ml加入上述青霉素液中,充分混合之后,8ml液体分装,-20℃保存,每99ml培养基中加入青链霉素混合液0.1ml,其终浓度青霉素100u/ml;链霉素100ug/ml 5)冻存液配制 DSMO加入小牛血清,DSMO浓度为10%;注意,DSMO要避光保存。 (三)操作步骤 准备工作 试剂的准备(见试剂配制部分) 设备及器材的准备 确保操作台洁净,所用物品经过高压或者其他方式消毒 细胞复苏 1. 将冻存的细胞取出后迅速放入37℃水浴中,并不时摇动,在一分钟内使其完全融化 2. 将细胞吸出放入有培养基的离心管中中,用滴管轻轻吹打混匀,800转/min,5分钟离心;弃去上清液,加入培养基,混匀再离心一次,弃液,加入4~5ml 培养基,混匀,移入培养瓶中 细胞换液 1. 用旧液体轻轻冲洗培养瓶底,然后用滴管吸尽旧液(弃去) 2. 加入PBS1~2ml,轻轻摇晃,然后用滴管吸尽旧液(弃去) 3. 如果细胞液比较脏,可以重复步骤2 4. 加入新培养基,轻轻摇匀,放入培养箱继续培养 细胞传代 1. 用旧液体轻轻冲洗培养瓶底,然后用滴管吸尽旧液(弃去) 2. 加入PBS1~2ml,轻轻摇晃,然后用滴管吸尽旧液(弃去) 3. 加入约1~1.5ml胰酶,室温或培养箱中放置4~5分钟,直到所有贴壁细胞消化下来为止【判断方法:倒置相差显微镜观察,细胞变圆时就可以终止消化】 4. 加入约1ml培养基(含有小牛血清)终止消化 5. 用滴管吹洗一次,移入离心管, 800转/min,5分钟离心 6. 加入培养基,吹打分散细胞,再根据分传细胞瓶数补加一定量的含血清的培养基,制成细胞悬液;分装至2~3个培养瓶中 7. 放入培养箱进行培养 细胞计数 1. 准备好显微镜、载玻片、盖玻片、血细胞计数板、吸管等仪器设备 2. 按照“细胞传代”中讲述的方法制成细胞悬液 3. 将细胞悬液取出若干,滴入血细胞计数板,注意不要有气泡进入 4. 加样后静置2~3min后观察,数四角大格内的细胞总数。计数时应按照一定的路径,以免遗漏或重复。细胞压线时计上不计下,计左不计右,计数2~3次,取平均值 5. 细胞密度 = 四大格中细胞总数÷4 ×104 = 细胞数/ml悬液 细胞冻存 1. 重复“细胞传代”中的消化细胞的步骤,将细胞消化下来,转移至离心管800转/min,5分钟离心,弃液 2. 沉淀中加入冻存液,轻吹制成悬液 3. 分转到冻存管内,每个1~1.5ml 4. 将冻存管口封严 5. 贴上标签,注明冻存时间、细胞种类及代数 6. 按下列顺序降温,并最终冻存:室温→ 4℃ 20min → -20℃ 30min →-70℃冻存 |
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