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科研战神来了

新虫 (小有名气)

[交流] 做 WB 栽在组织提蛋白上?这份实操经验收好

今天给大家分享组织样本蛋白提取实操流程,适配 WB 实验,整套操作围绕低温环境开展,降低蛋白降解风险。
一、实验前期准备提前备好预冷的RIPA 裂解液、蛋白酶抑制剂、磷酸酶抑制剂、BCA 蛋白定量试剂盒、5× 蛋白上样缓冲液(loading buffer)、无菌 EP 管、组织研磨珠、组织研磨仪、高速冷冻离心机。提前开启离心机预冷至4℃,准备冰盒,后续所有操作在冰上完成。

二、组织称重与裂解液配制称取30 mg新鲜或者冻存组织样本。按照1:15的比例加入裂解液,本次样本加入450 μL裂解体系。裂解液现配现用,配比为RIPA: 蛋白酶抑制剂:磷酸酶抑制剂 = 100:1:1。实验不检测磷酸化修饰蛋白时,可以省去磷酸酶抑制剂。

三、组织研磨破碎将组织、裂解液、研磨珠一同放入 EP 管,放置于组织研磨仪。设置参数30 Hz,单次研磨50 s,重复研磨3~5 次,直到管内组织完全变为匀浆状态。研磨间隙可以短暂放置冰上降温,避免研磨产热造成蛋白降解。

四、冰上裂解孵育研磨结束后,将 EP 管置于冰上静置30 min,让组织充分裂解。期间可以每隔 10 min 轻柔颠倒混匀一次。

五、离心取上清使用预冷好的高速离心机,4℃、12000 ×g条件离心20 min。离心结束后小心吸取上层澄清液体,转移至新的预冷 EP 管。吸取上清时避开上层白色脂肪层和底部沉淀,不要吸入杂质。

六、BCA 蛋白浓度测定预留少量蛋白原液,稀释 10 倍,组织蛋白浓度普遍偏高,稀释后再检测,避免超出标准曲线范围。按照 BCA 试剂盒说明书操作,测定各组蛋白浓度。

七、蛋白样本归一化以所有样本里最低蛋白浓度为基准,统一调整各组蛋白体积,实现蛋白上样量归一化,保证后续 WB 内参条带对齐。八、蛋白变性处理按照试剂盒说明,加入对应体积的 loading buffer。混匀后进行变性处理,常规蛋白100℃水浴加热 10 min。部分膜蛋白不耐受高温,可调整变性温度,或者省略煮沸步骤。九、分装保存变性完成后,将蛋白样本分装至多个 EP 管,标记好样本信息,放入**-80℃**冰箱储存。分装可以减少样本反复冻融的次数,防止蛋白降解。
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