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科研战神来了

新虫 (小有名气)

[交流] 转细胞用质粒还是病毒好呢?如何进行选择呢? 已有1人参与

对于生物学研究来说,转染实验是探索基因功能、蛋白质表达的关键技术。但在实验设计初期,许多人都会面临这样一个问题:选择质粒转染还是病毒感染?实际上两种方法各有优劣,适用场景也存在显著差异。01
质粒转染质粒是一种环状双链 DNA 分子,可通过物理、化学或生物方法(如脂质体、电穿孔、磷酸钙沉淀等)进入细胞。进入细胞后,质粒上的目的基因可在细胞内进行转录和翻译,实现目的蛋白的表达。值得注意的是,质粒通常不会整合到细胞基因组中,因此其表达具有 “瞬时性”—— 随着细胞分裂,质粒会逐渐丢失,一般仅能维持 1-7 天(具体时长因细胞类型和分裂速度而异)。02
病毒感染病毒感染是利用病毒的感染能力,将目的基因导入细胞。常用的病毒载体包括慢病毒、腺病毒、腺相关病毒(AAV)等。其原理是:将病毒基因组中与复制相关的关键基因替换为目的基因,构建重组病毒载体;当重组病毒感染细胞时,会将目的基因带入细胞内,部分病毒载体(如慢病毒)还能将目的基因整合到细胞基因组中,实现目的基因的长期稳定表达。
质粒转染
1.被动扩散进入细胞
2.无基因组整合,表达周期短(1-7天),适合短期瞬时实

3.操作简单,仅需将质粒与转染试剂混合后孵育细胞,1-2天即可完成转染并观察结果4.兼容性强,常规质粒可容纳10kb 以内的目的基因,大型质粒(如 BAC 载体)甚至可容纳更大片段,能满足多数基因研究需求。
病毒感染
1.主动侵染细胞
2.部分病毒载体(如慢病毒、AAV)
可将目的基因整合到细胞基因组,目的基因随细胞分裂稳定传递,能实现长期稳定表达
3.前期病毒包装流程复杂,涉及包装细胞培养、病毒收集与纯化等步骤,
实验周期长达 1-2 周
4.对小片段目的基因(如 2-5kb)兼容性好,病毒包装效率高;但是不同病毒载体上限差异大(腺病毒约7.5kb、AAV约4.7kb),超出容量会显著降低病毒包装效率,甚至导致包装失败,无法满足大片段基因研究需求。
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科研检测交流

金虫 (正式写手)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
选择质粒还是病毒转细胞,需根据转染效率要求、细胞类型(如难转染细胞更适合病毒)、是否需稳定表达(病毒更易整合)及安全性等综合判断,质粒操作简单安全,病毒转染效率高但构建复杂且需注意生物安全。
2楼2025-10-17 09:42:09
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