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richenim金虫 (小有名气)
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我做MTT,我的化合物怎么没有效果啊?
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你好!冒昧打搅了,看到你给关于救助MTT问题的回复,我有些关于MTT的问题想请教你下,谢谢! 我也是用MTT法做一个文献报道的有抗癌活性的化合物对PC-3细胞的细胞毒性实验,但是结果却和文献报道的不同,一点效果都没有,也不知道是怎么回事。 我是这样操作的:前一天晚上接种于96孔板(100微升),第二天给药(按照文献报道的浓度选择了高、中、低三个浓度给药10微升),分别培养24h和48h后给MTT,孵育4h后弃去上清液加DMSO,振荡10min左右后用酶标仪测0D值(490nm),结果却是空白组、对照组、实验组的OD值接近(OD值在0.7左右),几乎没有差别,我做了几次都是这样的结果,我还同时选用苦参碱和槐果碱做了下对照,苦参碱和槐果碱都有很显著的抑制细胞活力的现象。我实在是不在知道我哪里出了问题,但就是没有结果,希望你能给点建议,谢谢!!! 还想请问下如何可以检验我的化合物与MTT是否反应?在文献上没有报道我的化合物有还原性。 |
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HarveyWang
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![]() 楼主MM有问题尽管问,解答如下: (1)楼主同时做了阳性对照,这说明不是你的操作问题。 而且用的是药物相同浓度时对相同细胞的影响。。。 你为啥不怀疑是那篇文章有猫腻呢。。。哈哈哈哈。。。 (2)MTT会跟培养基中的蛋白、多肽类物质有反应的。 这类物质通常也没人报道其还原性。 而且保温时间越长MTT被还原越多,最终生成的甲噆就越多。 血清培养基最好不含有干扰甲噆测定的其他有色物质。 (3)检验化合物A与MTT是否反应,真是很简单啊! 你的化合物如果没有巯基之类的, 像单纯的萜类或不饱和双键很难会还原MTT! 将试验范围内不同浓度的该化合物+细胞培养基 混匀, 跟MTT保温一定时间,(就像测定细胞活性的操作一样) 最后测定终产物的吸光值。 [ Last edited by HarveyWang on 2009-10-4 at 22:42 ] |

2楼2009-10-04 22:40:52
richenim
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谢谢你的建议! 很多外文文献都报道这个化合物是有抗癌活性的;我用的培养基是hams F12(GIBCO)和德国Biochrom的血清,怎么检验我的培养基是否会还原MTT啊? 我的化合物是含有巯基和双键的化合物。 ps: “试验范围内不同浓度的该化合物+细胞培养基 混匀,跟MTT保温一定时间,最后测定终产物的吸光值。” 在跟MTT保温一定时间后也需要弃去上清液再加DMSO吗?如果弃去了上清液那不是什么都测不到了啊? 我怀疑是不是我给药的剂量太少了啊,估计30微升的化合物要稀释100倍,才取10微升加入到培养板里。还有一个我怀疑的问题是我的化合物(脂溶性化合物)水溶性很不好,要先用DMSO溶解,但我每次用100微升的DMSO溶解后再加水,还是能看到漂浮的油状物,根本就没溶解完全,但DMSO量太大对细胞又有毒性。我实在是不知道还有什么原因了。 希望给予指点,谢谢! |
3楼2009-10-05 00:49:07
HarveyWang
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很多外文文献都报道这个化合物是有抗癌活性的;我用的培养基是hams F12(GIBCO)和德国Biochrom的血清,怎么检验我的培养基是否会还原MTT啊? 我的化合物是含有巯基和双键的化合物。 ps: “试验范围内不同浓度的该化合物+细胞培养基 混匀,跟MTT保温一定时间,最后测定终产物的吸光值。” 在跟MTT保温一定时间后也需要弃去上清液再加DMSO吗?如果弃去了上清液那不是什么都测不到了啊? 我怀疑是不是我给药的剂量太少了啊,估计30微升的化合物要稀释100倍,才取10微升加入到培养板里。还有一个我怀疑的问题是我的化合物(脂溶性化合物)水溶性很不好,要先用DMSO溶解,但我每次用100微升的DMSO溶解后再加水,还是能看到漂浮的油状物,根本就没溶解完全,但DMSO量太大对细胞又有毒性。我实在是不知道还有什么原因了。 ------------------------------ (1)很多外文文献都报道这个化合物是有抗癌活性的;我用的培养基是hams F12(GIBCO)和德国Biochrom的血清,怎么检验我的培养基是否会还原MTT啊? 我的化合物是含有巯基和双键的化合物。 解答: 如果很多人都能重复出相同的结论,而不是单独的一家实验室的结果,那还真要考虑是否是自己的操作有问题了。 血清肯定会对MTT 的还原反应产生影响,都是会还原MTT,是最终的OD读数增加的。 你的化合物含有巯基,很可能会使MTT反应的最终OD增加。 但是,血清或者你的巯基化合物使 MTT反应OD增加的这个速率,很可能要小于MTT被还原性的NADH/NADPH还原的速率。这个我做过实验。就是单纯的干扰反应的测定,没有细胞参与的。操作见下面的介绍。 (2)ps: “试验范围内不同浓度的该化合物+细胞培养基 混匀,跟MTT保温一定时间,最后测定终产物的吸光值。” 在跟MTT保温一定时间后也需要弃去上清液再加DMSO吗?如果弃去了上清液那不是什么都测不到了啊? 解答: 操作略微不同于细胞的MTT活性测定。操作可见附图一。 我就是这么做干扰影响的。 反应是在1.5 mL EP管内进行,用PBS (50 mM, pH7.0)做缓冲(没有MTT干扰的能力的),然后加入干扰物 (这里就是不同浓度的巯基化合物,血清也可一样测定干扰能力) 然后加双蒸水和MTT母液,补足200 uL体积 37℃,暗处反应一定时间,反应液就会由黄色变成紫色(不溶物甲噆生成) 10000rpm, 60sec离心,可完全沉淀不溶物, 然后小心吸干净上清液,先加1000 uL DMSO完全溶解沉淀, 再用1000 uL 和500 uL清洗EP管,将紫色的DMSO倒入玻璃试管, 最后测定OD。 (3)我怀疑是不是我给药的剂量太少了啊,估计30微升的化合物要稀释100倍,才取10微升加入到培养板里。还有一个我怀疑的问题是我的化合物(脂溶性化合物)水溶性很不好,要先用DMSO溶解,但我每次用100微升的DMSO溶解后再加水,还是能看到漂浮的油状物,根本就没溶解完全,但DMSO量太大对细胞又有毒性。我实在是不知道还有什么原因了。 解答: 很可能是你加样时没有混匀哦! 估计30微升的化合物要稀释100倍,才取10微升加入到培养板里 问题可能就出在这里,用水稀释后你的化合物又析出来啦!你吸取试剂的时候不均匀啊!所以先解决药物的溶解问题! 文献是怎么做的啊?建议你直接加其DMSO溶解液或换用其他的有机溶剂。只能是按细胞能忍受的最高DMSO浓度加了。不过这样肯定要做三个加同样体积的DMSO的细胞对照孔。 [ Last edited by HarveyWang on 2009-10-5 at 08:34 ] |

4楼2009-10-05 08:30:37
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(1) 那我先做一下这个干扰实验看看我的化合物是否对MTT有影响。问一下,最后转移到玻璃试管里,也是用酶标仪测OD值吗?我们实验室的酶标仪只能测96孔板、24孔板、12孔板等哦。 解答:仔细看那个图哇!MM。 用分光光度计。你们肯定有的。 水不溶性的甲噆用 分析纯的 DMSO 有机溶剂 来完全溶解。溶解速度很快的,这个我试验过了,你不必再优化,很好用。 (2)文献报道的一般都是用DMSO做有机溶剂的,只是DMSO的最终浓度有的是0.1%,有的是0.5%,也有用无水乙醇来做溶剂的。我再多查些文献看有没有其他溶剂。“只能是按细胞能忍受的最高DMSO浓度加了。不过这样肯定要做三个加同样体积的DMSO的细胞对照孔。”为什么要加三个啊? 呵呵。。。谢谢给你给了我怎么多建议啊! 解答: 脂溶性的药物用无水乙醇溶解,估计够呛! DMSO 最终可加到 0.5%。 就是说,200 uL 可以直接加 1uL DMSO溶解的药物。 所以你的那个化合物A 可以用DMSO来做溶解,到时用水稀释5倍左右,看看会有多少析出。如果可以,就可以加稀释液 5uL/孔。 为了做有效的DMSO抑制生长对照,要用同样稀释倍数的DMSO水溶液, 建议每次做三个孔,做重复啊。 你的药物抑制试验,是做的几个重复啊? |

6楼2009-10-05 15:12:29
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