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汕头大学海洋科学接受调剂
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alfabeta

新虫 (小有名气)

[交流] 酵母DNA提取——诡异的结果

我已提了好几次酵母基因组DNA,但每次都出现诡异的情况。我采用石英砂法和蜗牛酶两种方法。采用蜗牛酶法时,在1500bp位置出现两条带。采用石英砂法时,在20000bp, 6000bp和2000bp的位置出现条带,总共有三条带。不知是什么原因造成的,当初怀疑是蜗牛酶的问题,所以采用石英砂法,但还是出现多条带。这两种方法和文献中的方法基本上是一样的。

请各位虫友看看是什么原因造成的,或提供一些好的酵母DNA提取方法。
在此谢过!以下是提DNA的具体方法。


一、石英砂法
① 5000rpm×5min 收集过夜培养的菌体(5ml左右),于 200μL 裂解液(50 mmol/ L Tris-HCl pH 8.0 , 180 mmol/ L EDTA pH 8.0 , 1 % SDS , 现配)中,加入 3/10 总体积石英砂在涡流混合器上振荡 13min,每隔 4min 将离心管取出用力甩几下,然后 65℃水浴 10min。
② 加入 200μL 5mol/L KAc,冰浴 8min;
③ 12000rpm×5min 转移上清至新的离心管中;
④ 加入 3 mol/L NaAc 35ul,加入异丙醇 200μL 混匀后冰浴 8min,12000rpm×5min收集沉淀;
⑤ 200μL TE 溶解,加入 RNase 10μL,65℃水浴 10min;
⑥ 加入 200μL 氯仿-异戊醇(24:1),抽提;
⑦ 温柔地取上清 150μL ,加入 20μL 3 mol/L NaAc 及 375μL 无水乙醇,混匀后12000rpm×8min 收集 DNA;
⑧ 70% 乙醇洗涤沉淀,吹干后 TE 溶解,-20℃保藏。


二、蜗牛酶法
1. 接种于5 ml的YEPD培养基中在25℃-28℃振荡培养12-16 h。
2. 3500 rpm离心5min沉淀细胞,用1ml 的无菌水洗涤一次,再加0.5ml solution Ⅰ(1M 山梨醇,0.1M EDTA, pH=7.5)重悬。
3. 转移细胞至1.5 ml 的离心管中,加入0.1蜗牛酶 (30mg/ml)溶液,37℃保温30-60min, 以获得原生质体。
4. 最大转速离心1min以沉淀细胞,用500ul solutionⅡ(50mM Tris-HCl, 20mM EDTA, pH=7.4)溶液悬浮,然后加入50ul 10% SDS, 混合65℃保温30min。
5. 加入200ul 5M 醋酸钾,放于冰上30 min。
6. 最大转速离心15min,转移上清液至新的离心管中,用等体积的异丙醇沉淀DNA。
7. 室温下放置5min,离心10min,用70%的乙醇洗涤一次,真空干燥,用50ul pH=7.4 TE溶液溶解。
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alfabeta

新虫 (小有名气)

真诚感谢!准备试试看。
4楼2009-09-15 08:52:08
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fushxmy

金虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
我给你提供一个方法吧,是我们实验室常用的:
1、先配一个破菌缓冲液:
Triton X-100        2%(v/v)        SDS        1%(w/v)
NaCl        100mM        Tris•HCl(pH 8.0)        10mM
2、把酵母细胞离心收集,加入200ul的破菌液再加200ul的酚氯仿,vortex一分钟,放在冰上一分钟,一共反复4次
3、加入500ul的ddH2O,vortex,离心,抽上清和等体积的酚氯仿混合
4、vortex,离心,抽上清和等体积的酚氯仿混合
重复4直到离心后两层之间没有蛋白出现
5、抽上清加1ml的无水乙醇,放在-20度30min
6、离心,抽上清,再用70%乙醇洗一次,真空干燥,用TE或ddH20溶解

此法我用了好几年均很正常,酵母基因组提起来很粗糙,但是很好使。
秦皇汉武
2楼2009-09-14 22:09:55
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fushxmy

金虫 (正式写手)

对了,第二步忘记了再加200ul的石英吵或玻璃珠
秦皇汉武
3楼2009-09-14 22:11:36
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caicaiyy

铜虫 (小有名气)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
你知道你所提的酵母大概分子质量吗?可能是污染了外源DNA,电泳时没做对照吗?
5楼2009-10-08 10:17:29
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