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求助!做多肽的抑菌实验用PB会析出 已有1人参与
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应化本科生,不是学微生物的,只是导师要求做抑菌实验,都是靠实验室里前几届学生摸索出来的方法。 说下方法: ①多肽用蒸馏水配制出不同浓度; ②活化斜面的大肠杆菌后,用3ml的30mmol/l的 pb(十二水磷酸氢二钠 + 二水合磷酸二氢钠)把斜面的菌冲下来; ③稀释出浊度ok的菌液进行比浊(已通过预实验确定了浊度); ④将不同浓度的多肽水溶液(200微升)+菌液(200微升)混合均匀,37.5℃下反应1h; ⑤后面就是梯度稀释和平板涂布。 问题来了,第④步混合好之后,多肽是没析出的,但是反应完后很明显地析出了,应该是不溶于pb的问题。这个多肽在以前就尝试用pb配,经过超声和加热都是不溶的,加了三氟乙醇再超声加热好像也不行,加了甲醇析出更厉害了。多肽能溶于蒸馏水,这次只是抱着侥幸心理试一下能不能做抑菌,就在反应完析出了。 想问下稀释涂布平板的抑菌实验,万一多肽能溶于生理盐水的话,能用生理盐水代替pb做吗?生理盐水和pb对大肠杆菌的渗透压等方面有影响吗?它俩做出来的空白组菌落数,有区别吗? 配制多肽溶液的时候,可以加入六氟异丙醇(hfip)之后再用原本的方法做抑菌吗,会不会在pb里不析出了? 如果用生理盐水代替或者六氟异丙醇增溶的方法不行,还有其他方法做多肽的抑菌实验吗? 有看到外文文献用液体培养基,但我看得一头雾水。如果可以的话,麻烦附上方法的一些资料,例如步骤、参考文献等等。 非常感谢大佬们的解答!!! |
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