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求大神指导!多谢!关于用巢式PCR来做race的相关问题!已有1人参与
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各位大神你们好! 我的问题是这样的: 有一段基因NCBI上还没有经过验证, 我想得到一段基因的cds complete,但是根据转录组测序给的cds predict设计引物一直没有p出条带, 于是,我比对了同源基因,在保守区设计了引物,顺利p出中间一段基因。测过序了,有大概1200bp, 接下来,我需要做5’race和3’race, 请教了卖试剂盒的老师, 她说如果设计5’race巢式PCR,那么GSP1与GSP2之间大概间隔100bp,GSP2与模板交联100bp, 3’race同理, 那么问题来了, 我如果分别做出5’race和3’race,我需要把p出的条带分别拿去测序吗? 然后根据5’race和3’race测序结果继续设计引物,重新p全长吗? 还是说我设计5’race和3’race引物的时候交叉一下?可是交叉的话那样跟模板交联的就不是100bp而是1200bp左右了啊。 ![]() |
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渊博震天
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【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★
silicare: 金币+5, BioEPI+1 2018-07-31 17:32:44
silicare: 金币+5, BioEPI+1 2018-07-31 17:32:44
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当然是能出现特异性条带的PCR是最好的 ,既然出来了淡淡拿的条带现在有两个方法:1、多P几管,之后过PCR柱式产物纯化试剂盒回收,2、设计特异性引物再进行巢式PCR。我建议你在用降落PCR的同时,多设计几个特异性引物多P几轮进行降落巢式PCR。构建文库我暂时还没做过,所以不做评价。设计引物时软件的评分作为一个参考,当然如果软件评分奇差的话,就建议换换位置设计。“目前我是在靠近两端200bp以内设计的,并且优先考虑跟其他的物种较为同源的序列”这句话的意思是这个特异性引物设计是根据比对出来的? PCR原装的酶确实效果很好,如果用完了的话可以考虑用“反转录酶 PrimeScript™ II Reverse Transcriptase”或者“反转录酶 PrimeScript™ Reverse Transcriptase”代替 UPM用完了可以参照网上的进行混合,但是要注意配置的时候用的离心管、枪头和水保证RNA Free的 |
6楼2018-07-13 13:27:40
渊博震天
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【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
pcr的兔子: 金币+5, ★★★很有帮助 2018-06-20 19:38:05
感谢参与,应助指数 +1
pcr的兔子: 金币+5, ★★★很有帮助 2018-06-20 19:38:05
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GSP引物设计是这样的,首先在你已经p出来测序的中间序列中设计GSP1引物,注意别与接头引物形成稳定二聚体啥的,同时退火温度要高。GSP2设计同GSP1,GSP2是为了防止第一轮非特异性扩增而进行巢式PCR设计的引物,有时候可能需要三轮才出特异条带。当特异性条带出现后TA克隆去测序,出来的序列再与已知中间序列拼接即可知道完整序列。5'相对要难一些,注意RNA完整性一定要高!!! 发自小木虫Android客户端 |
2楼2018-04-30 15:26:35
3楼2018-07-06 00:41:44
渊博震天
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4楼2018-07-06 08:26:28
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版主你好,在使用宝生物的盒子做RACE的过程中,①怎样的PCR是比较合适的呢?目前我尝试了说明书里的降落PCR和一般的PCR,效果都不是很显著,只有一个引物有微弱的条带,但是不足以将其纯化回收出来。另外,想请问一下,②是否有方法可以检测一下构建的文库的质量呢?我检测了RNA的完整性很好但是我办法保证我构建的文库的质量很好啊。在设计引物的时候,③是否应该过分关注软件的评分呢?比如错配,发卡结构之类的。目前我是在靠近两端200bp以内设计的,并且优先考虑跟其他的物种较为同源的序列,④不知道这个原则是否是最优的选择。关于试剂的问题我有一个问题想问问,构建文库以后,进行的PCR那步原装的酶用完了,我用其他的进行了代替,⑤效果不好不知道这个方案可行吗?或者有什么酶可以推荐代替的,原装的那个酶太贵了。还有就是UPM用完了,⑥我参照网上的 0.4uM 长引物和2uM 短引物的比例进行配比制作,不知道这个配比是否正确,混合过程有什么需要注意的吗? 问题有点多,还请版主海涵,谢谢版主。 |
5楼2018-07-13 11:47:48
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十分感谢版主的回复。第一点目前还没有试过巢式PCR,谢谢版主的提示我着手试一试。第二点“构建文库”,我可能没有表述清楚,构建文库就是做RACE之前的那个反转录,如果反转录都不做怎么开始做末端扩增呢?第三点引物设计那块,基础序列是来自于转录组数据,不是全场,然后在做了普通PCR从两头往中间扩增,得到准确序列之后,blast结果出来,跟相近的序列比对,发现,有同源性非常高的部分,然后设计引物的位置是在3'和5'两端200bp以内的位置设计的(目前的参考片段有800+)。第四点,感谢版主推荐的酶,感谢版主回答我的问题,谢谢! 发自小木虫Android客户端 |
7楼2018-07-13 23:54:34














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,既然出来了淡淡拿的条带现在有两个方法:1、多P几管,之后过PCR柱式产物纯化试剂盒回收,2、设计特异性引物再进行巢式PCR。我建议你在用降落PCR的同时,多设计几个特异性引物多P几轮进行降落巢式PCR。构建文库我暂时还没做过,所以不做评价。设计引物时软件的评分作为一个参考,当然如果软件评分奇差的话,就建议换换位置设计。