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求助MTT法检测加药后抑制肿瘤细胞的结果分析(附图)
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实验步骤: 1.按冻存细胞的方法消化细胞,每孔接种100μl细胞悬液(周四)。 2.培养一天待细胞贴壁后,换液,加入ADR(阿霉素),进行实验处理(周五下午1:00)。 3.继续培养1~2天后去培养液,加入当天配制的MTT溶液每孔100μl,37℃恒温箱中4小时。 4.吸去MTT溶液,加入DMSO每孔100μl,混匀。 5.在酶标仪上测定吸光度,测定波长595nm. 在96孔板上加一个对照组(不加药),4个浓度组,每个处理平行的做6组,一共30个孔. 得到的曲线是不是不太对阿? 或者再怎么处理数据? |
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细胞培养 |
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zhaocy8903
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3楼2008-12-20 10:01:57
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cauzhangtao
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lwf991229(金币+1,VIP+0):感谢参与讨论~~
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对你这个结果我分析了一下。首先你的细胞数目不知道,只知道100μL,还有就是OD值偏小,以我的经验OD值在0.5-1.2之间比较好,其次就是检测的波长,490nm。我不知道你为什么是595nm,详细步骤: 1、收集对数期细胞,调整细胞悬液浓度,每孔加入100ul,铺板使待测细胞调密度至1000-10000孔,(边缘孔用无菌PBS填充)。 2.、5%CO2,37℃孵育,至细胞单层铺满孔底(96孔平底板),加入浓度梯度的药物,原则上,细胞贴壁后即可加药,或两小时,或半天时间,但我们常在前一天下午铺板,次日上午加药.一般5-7个梯度,每孔100ul,设3-5个复孔.建议设5个,否则难以反应真实情况 3.、5%CO2,37℃孵育16-48小时,倒置显微镜下观察。 4、每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),继续培养4h。若药物与MTT能够反应,可先离心后弃去培养液,小心用PBS冲2-3遍后,再加入含MTT的培养液。 5、终止培养,小心吸去孔内培养液。 6、每孔加入150ul二甲基亚砜,置摇床上低速振荡10min,使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪OD490nm处测量各孔的吸光值。 7、同时设置调零孔(培养基、MTT、二甲基亚砜),对照孔(细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜) |
4楼2008-12-20 10:27:24
zhaocy8903
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5楼2008-12-20 16:20:12











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