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Nigori

铜虫 (小有名气)

[交流] 大鼠肝星状细胞原代培养实验 已有4人参与

大鼠肝星状细胞原代培养可以:(1)用于细胞保种;(2)用于分子生物学研究;(3)用于基因治疗研究。

实验方法原理

将小鼠的肝细胞从机体中取出,经胰酶、螯合剂(常用EDTA)处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖。

实验材料

SD大鼠

试剂、试剂盒:戊巴比妥钠、小牛血清、DMEM、酶消化液、D-Hanks' 液、酚红、台盼兰、HBSS、氯化钠、PBS

仪器、耗材:手术刀、手术剪、尼龙网、相差显微镜、荧光显微镜

一、实验材料准备

1.  动物:雄性SD大鼠(体重250-450 g)。 

2.   试剂:戊巴比妥钠,小牛血清(或胎牛血清,则更好),DMEM,酶消化液I、Ⅱ(以HBSS配),18% Nycodenz(以GBSS配),D-Hanks' 液(KCl 0.4 g/L,KH2PO4 0.06 g/L,NaCl 8.0 g/L,NaHCO3 0.35 g/L,Na2HPO4.7H2O 0.06 g/L或Na2HPO4 0.053 g/L,可加酚红 0.02 g/L),HBSS,台盼兰等。 

3.  器械:手术器械,200目尼龙网,相差显微镜,荧光显微镜。 

二、原代培养方法 

1.  大鼠腹腔麻醉后在超净台上剖腹,进行门静脉插管,以D-Hanks'液灌注,同时剪开下腔静脉,冲掉血液后,改灌以100 ml酶消化液I(0.05% IV型胶原酶)。

2.  待肝脏变软后,离体肝脏并剪碎,继续以酶消化液II(含20 U/ml DNase I的0.05% IV型胶原酶)消化15 min,尼龙网过滤后以450 g 离心5 min(4℃,下同)。

3.  以HBSS重悬沉淀至10 ml,再混以20 ml Nycodenz液,分置于离心管中,并分别覆以2-3 ml HBSS,1450 g离心16 min后取界面细胞。

4.  以HBSS重悬后再次离心收集细胞,以DMEM重悬后进行细胞计数,并判断存活率和产量,最后按照常规方法接种(105细胞/cm2),次日换液,以后每2-3天换液一次。

三、传代方法

弃去培液后以D-Hanks'液洗两次,加0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化,镜下观察细胞突起回缩(2-5 min左右),以完全培液(DMEM+10% NBS)终止反应(若不用EDTA,可以不需离心),充分吹打后以1:2-1:3接种,然后继续培养(5% CO2,37℃)。

四、 结果

接种次日,光镜下可见细胞呈星芒状,胞质内有脂滴,荧光镜下328 nm处见自发荧光。

五、注意事项

1.  进一步鉴别需要做免疫组化:Desmin和α-SMA;后者在细胞激活后才表达。

2.  采用无须原位消化的方案,完全可行,只不过消化时间更难控制!实验采用原代培养的或传代后9代内的细胞(最好5代以内)。
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fdk839375548

新虫 (初入文坛)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
还有就是大部分文献采用的是门静脉进针,下侧的下腔静脉出液;如果是下侧下腔静脉进针,门静脉出液效果会差一些吗?
6楼2017-10-25 22:16:09
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行者JCC

新虫 (初入文坛)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
很有用,非常感谢,感谢感谢
3楼2016-12-28 16:32:56
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fdk839375548

新虫 (初入文坛)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
使用胰酶蛋白酶消化肝脏是不是会使原代肝星状细胞活力降低很多,以至于无法贴壁无法存活呢?之前我尝试了好多次传统的分离方法,可以得到细胞,就是无法进行培养传代。
4楼2017-10-25 22:01:59
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fdk839375548

新虫 (初入文坛)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
引用回帖:
4楼: Originally posted by fdk839375548 at 2017-10-25 22:01:59
使用胰酶蛋白酶消化肝脏是不是会使原代肝星状细胞活力降低很多,以至于无法贴壁无法存活呢?之前我尝试了好多次传统的分离方法,可以得到细胞,就是无法进行培养传代。

用的是连酶蛋白酶破坏肝细胞 纠正一下
5楼2017-10-25 22:06:40
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