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蛋白纯化手记
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| 经过多次蛋白纯化实验,还是在细节中出现很多的错误,比如缓冲液在调整ph后定容,发现ph改变了。再比如酶液在调整ph时加酸过快导致部分蛋白变性析出等等,细节决定一切的道理在今天的实验中体现地真真切切的。由于一直在优化ph对酶活回收率的提高问题,所以今天选择了6.5和6.0两个ph上样,洗脱。6.5ph的酶液是利用7.5酶液加0.05m的磷酸二氢钠调节的。6.0ph是利用酶液加磷酸溶液和磷酸二氢钠,因为磷酸对蛋白影响大,所以加了一点之后就改用后者了。6.0酶液的离子强度应该比较大,这对实验是有很大影响的,下次将首先调节ph后在超滤,尽量维持较低的离子强度。洗脱过程中由于缓冲液的ph出现问题,也就是调整ph后定容ph变高了。所以两个实验的洗脱流出液ph基本上都是6.7左右,介于6.5和6.0中间。洗脱过程中只有0.4N出现酶活,以前都是在0.2开始出现。对比以前的实验发现,是上样量的问题,上样多,0.2N就洗脱出酶活。上样少0.4才能洗脱出。洗脱后计算6.5洗脱酶活77%,6.0洗脱酶活90%。虽然实验千疮百孔,但是结果如此还是想以此作为参考,进行下一次的重复实验。毕竟这次的实验酶活回收率是有差别的。 |
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8楼2016-06-13 09:05:15
9楼2016-06-17 19:31:00
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chentao2楼
2016-06-12 20:57
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zy晨曦(金币+2): 谢谢参与
tzynew3楼
2016-06-12 21:05
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zy晨曦(金币+2): 谢谢参与
nono20094楼
2016-06-12 21:07
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zy晨曦(金币+2): 谢谢参与
2016-06-12 21:08
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zy晨曦(金币+2): 谢谢参与
假大空6楼
2016-06-12 21:14
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zy晨曦(金币+2): 谢谢参与


2016-06-12 21:32
回复
祝福













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